RCGI V31 N63
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REGENERACIÓN DE PLANTAS A PARTIR DE RAÍCES TRANSFORMADAS DE PENTALINON ANDRIEUXII (MÜLL. ARG.) HANSEN & WUNDERLIN CON EL GEN DE LA PROTEÍNA<br />
ROJA FLUORESCENTE.<br />
características nuevas, para convertirla en un modelo de<br />
estudio para la producción masiva de metabolitos<br />
secundarios. El presente trabajo está basado en la<br />
transformación genética de plantas y la tecnología de cultivo<br />
de tejidos vegetales para la regeneración de plantas a partir<br />
de raíces transformadas utilizando la cepa bacteriana<br />
Agrobacterium rhizogenes que contiene el gen que codifica<br />
para la proteína roja fluorescente, debido a que los genes<br />
marcadores son una manera fácil para marcar las células<br />
transformadas con el propósito de investigar la expresión<br />
génica transitoria o para establecer la transformación.<br />
MATERIAL Y MÉTODOS<br />
La estrategia experimental consistió en la desinfestación de<br />
las semillas para la germinación, luego, la obtención de<br />
explantes para la transformación utilizando dos cepas de A.<br />
rhizogenes para obtener líneas de raíces transformadas y<br />
caracterizarlas estableciendo una curva de crecimiento y<br />
dándoles mantenimiento periódicamente para la inducción de<br />
brotes y posteriormente confirmar la transformación de<br />
raíces y brotes por medio de microscopía con filtros de<br />
fluorescencia roja y por análisis de PCR.<br />
Figura 5. Líneas de raíces transformadas de explantes de hoja e hipocótilo<br />
de Pentalinon andrieuxii en medio PC líquido adicionado con cefotaxima<br />
250 µgmL -1 .<br />
Para comprobar la transformación de las líneas de raíces<br />
obtenidas, se utilizó un estereoscopio modelo MZFL3 con<br />
filtros de fluorescencia roja, con cámara FLUO III, y cámara<br />
del lente DFL320 al 1x. En la figura 2 se muestran los<br />
resultados de la raíz testigo y las raíces transformadas que<br />
fueron utilizadas para ser observadas en el estereoscopio.<br />
RESULTADOS Y DISCUSIÓN<br />
Se realizó la transformación con explantes (hoja, raíz e<br />
hipocótilo) de P. andrieuxii con la cepa A. rhizogenes. En la<br />
siguiente tabla se muestra la frecuencia de infección con cada<br />
explante:<br />
Tabla 1. Frecuencia de infección (FI) con A. rhizogenes ATCC15834 y<br />
ATCC15834 RFP en explante de hipocótilo, hoja y raíz de P. andrieuxii.<br />
FI (%): # de explantes positivos/ # explantes infectados x 100. (Yam-Puc, et<br />
al; 2012b), P (%): Promedio de FI, - : No se realizó transformación.<br />
Los promedios de frecuencia de infección de los tres<br />
procesos realizados para la cepa ATCC15834 en el explante<br />
de hoja fue del 11.3%, hipocótilo 6.3% y raíz 0%.<br />
Se cuenta con tres líneas (A, A1 y B) de raíces transformadas<br />
con la cepa ATCC15834 RFP, a partir de hoja e hipocótilo<br />
establecidas previamente en el laboratorio (May-Mendoza,<br />
2014). En la figura 1 se muestran las líneas de raíces (AH,<br />
A1H, BHi), proveniente de diferentes explantes, con una<br />
morfología distinta.<br />
Figura 6. Raíces a partir de explantes de hoja, raíz e hipocótilo de<br />
Pentalinon andrieuxii, transformadas con A. rhizogenes (ATCC15834 RFP)<br />
que contiene el gen de la proteína roja fluorescente; imágenes tomadas en<br />
estereoscopio modelo MZFL3 con cámara FLUO III, cámara del lente<br />
DFL320 a 1x. Las letras muestran el testigo A: raíz testigo con luz normal,<br />
B: raíz testigo con fluorescencia, C: raíz testigo con fluorescencia y luz<br />
normal. 1: raíz transformada con luz normal, 2: raíz transformada con<br />
fluorescencia y 3: raíz transformada iluminada con fluorescencia y luz<br />
normal.<br />
Durante el mantenimiento de las raíces transformadas con A.<br />
rhizogenes ATCC15834 RFP estuvieron subcultivadas por<br />
siete meses en medio líquido adicionado con antibiótico<br />
cefotaxima 250µg/mL, en un orbitador a 100 rpm en cuarto<br />
de cultivo de luz contínua. A los siete meses de<br />
mantenimiento se observó la formación de brotes<br />
adventicios, por lo observado visualmente puede ser<br />
organogénesis directa, no se podría afirmar, debido que hasta<br />
el momento no se han realizado estudios histológicos que<br />
comprueben el origen en la formación de brotes ni en la<br />
formación de raíces. Ver fig. 3.<br />
66 REVISTA DEL CENTRO DE GRADUADOS E INVESTIGACIÓN. INSTITUTO TECNOLÓGICO MÉRIDA Vol. 31 NÚM. 63