RCGI V31 N63

More documents

Recommendations

Info

ACTIVIDAD ANTAGONISTA DE HONGOS ENDÓFITOS AISLADOS DE LA ESPECIE ACALYPHA GAUMERI PAX & HOFFM. (EUPHORBIACEAE) COLECTADA DE LA RESERVA DEL KIUIC, YUCATÁN secundarios contra C. capsici a una CMI de 1000 μg/mL. Lo anterior sugiere que los HE de A. gaumeri están produciendo otro tipo de metabolitos antifúngicos. AGRADECIMIENTOS Beca de inciación a la investigación (CICY 2016). Conacyt proyecto No. CB2009/131256 REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 1. Biotechnol, 24: 1955-1959. Suryanarayanan,et al (2009). Fungal endophytes and bioprospecting. Fungal Biol Rev, 23: 9-19. 2. Gómez Krupco Marina, (2014). AISLAMIENTO Y EVALUACIÓN ANTIFÚNGICA DE HONGOS ENDÓFITOS DE Acalypha gaumeri PAX Y K. HOFFM. Tesis de maestría. Mérida Yucatán, México. Centro de Investigación Científica de Yucatán. 186 REVISTA DEL CENTRO DE GRADUADOS E INVESTIGACIÓN. INSTITUTO TECNOLÓGICO MÉRIDA Vol. 31 NÚM. 63
COMUNICACIÓN CORTA BIOTECNOLOGÍA DE FERMENTACIONES REVISTA DEL CENTRO DE GRADUADOS E INVESTIGACIÓN. INSTITUTO TECNOLÓGICO DE MÉRIDA. Vol. 31 NÚM. 63. PP. 187 – 188 OCT. 2016 ISSN 0185-6294 PRODUCCIÓN DE BIOMASA EN LA FERMENTACIÓN DE LECHE POR GRÁNULOS DE KÉFIR Ramírez-Benítez, J.E 1 ., Vales Bautista, T.E. 1 , Caamal-Velázquez, H. 2 , Lizama-Uc, G 3 , Rodríguez-Ávila, N.L. 4 1 Universidad Autónoma de Campeche, FCQB, Av. Agustín Melgar s/n entre Calle 20 y Juan de la Barrera. Col. Buenavista. CP 24039, San Francisco de Campeche, Campeche. 2 Colegio de Posgraduados-Campus Campeche. km 17.5 Carr. Fed. Haltuchen-Edzna, Sihochac, Champotón, Camp. 3 Instituto Tecnológico de Mérida. Av. Tecnológico Km. 4.5 S/N CP 97118, Mérida, Yucatán 4 Instituto Tecnológico de Chiná. Calle 11 s/n entre 22 y 28 Chiná, Campeche, Autor de contacto: jeramire@uacam.mx Recibido: 30/agosto/2016 Aceptado: 29/septiembre/2016 Publicado: 19/octubre/2016 Palabras clave: kefir, diáuxico, suplemento. INTRODUCCIÓN El kéfir también es conocido como búlgaros de leche, es uno de los fermentos más antiguos conocidos, su microbiota simbiótica (prebióticos y probióticos) le confieren características particulares las cuales lo hacen un alimento funcional. Los gránulos de kéfir tienen un aspecto similar al de la coliflor pero es más blando y gelatinoso; es un consorcio microbiano simbiótico que combina bacterias probióticas, levaduras, lípidos y proteínas envueltas en una matriz de polisacárido, la cual se denomina kefirán. La microbiota del kéfir depende de su origen, región geográfica y el método de cultivo; destacando los principales probióticos Lactobacillus acidophilus y Bifidobacterium y la levadura Saccharomyces kéfir. Solo entre 5% y 10% de la población microbiana de los granos de kéfir son levaduras. Estos consorcios microbianos presentan una cinética de crecimiento atípica, incrementando su biomasa muy lentamente a lo largo del cultivo (1). Lo anterior es una limitante para la industrialización de los productos fermentados derivados del kéfir. Por lo tanto, el objetivo del presente trabajo es la optimización de los parámetros de fermentación, usando leche de vaca como sustrato, y enfocada al incremento de la producción de biomasa de gránulos de kéfir. biomasa, ensayando dos temperaturas de incubación 27 y 37 °C, usando leche sola o adicionada con extracto de levadura y proteína de suero de leche con un inóculo de 10 g/L de leche. Posteriormente, se determinó el aumento de la biomasa expresado en porcentaje, de acuerdo a la siguiente ecuación: % incremento biomasa = Peso fresco final − Peso fresco inicial x100 Peso fresco inicial Se hicieron 4 réplicas por cada experimento. RESULTADOS Y DISCUSIÓN Se observó un incremento máximo de biomasa del 59.14% a una concentración de inóculo de 10 g/L (Figura 1), usando leche entera como sustrato, para posteriormente disminuir la producción de biomasa a mayores concentraciones de inóculo. Este comportamiento es similar al observado por Gorsek y Tramsek (2) y Koutinas y col. (3), usando leche entera y suero enriquecido respectivamente. Asímismo, se determinó que la adición de extracto de levadura y suero de leche incrementan la producción de biomasa en un 95 y 89 % respectivamente. MATERIAL Y MÉTODOS Para determinar el tamaño de inóculo óptimo se realizaron fermentaciones con 2.5 a 50 g inóculo/L en leche de vaca. Para iniciar la fermentación se pesaron las muestras de acuerdo a las concentraciones y se colocaron en frascos estériles con 100 mL de leche de vaca, inmediatamente se colocaron en una estufa bacteriológica a 37 °C por 24 horas. A su vez se determinó la curva de crecimiento de los gránulos de kéfir, determinado la biomasa en frascos independientes, a diferentes intervalos de tiempo (2, 4, 6, 8, 12, 18, 24, 36, 48 h) con 10 g de inóculo/L de leche como sustrato. A su vez, se evaluó el efecto de la adición de 2% de aislado de proteína de suero de leche y 2% de extracto de levadura en la producción de biomasa, realizando fermentaciones de 24 h y 37 °C con 10 g de inóculo/L de leche. Por último, se evaluó el efecto de la temperatura en la producción de Figura 1. Ensayo de concentración de inóculo vs. Producción de biomasa en leche entera a 37 ºC. Las columnas representan los promedios y las barras las desviaciones estándar de 4 réplicas. Los gránulos de kéfir presentan un crecimiento con comportamiento diáuxico (figura 2), con una fase de adaptación intermedia entre las 8 y 24 h de cultivo. Lo anterior es muy común en fermentaciones etanólicas por estos consorcios, debido a una sucesión de las levaduras en T E C N O L Ó G I C O N A C I O N A L D E M É X I C O . I. T. M É R I D A
Page 1 and 2:
REVISTA DEL CENTRO DE GRADUADOS E I
Page 3:
S O C I E D A D M E X I C A N A D E
Page 7 and 8:
Page 9 and 10:
Page 11:
Page 14 and 15:
ANÁLISIS DE LA ACTIVIDAD OVÁRICA
Page 16 and 17:
DETECCIÓN TEMPRANA DE LA MAREA ROJ
Page 18 and 19:
conc. chlor-a (mg/m³) (mg/L) de O.
Page 20 and 21:
ARTÍCULO DE INVESTIGACIÓN BIOTECN
Page 22 and 23:
TELLO.J., JIMÉNEZ N. Y CHAN A. pro
Page 24 and 25:
Page 26 and 27:
Rodríguez-Gil, L.A, Reyes-Sosa, C.
Page 28 and 29:
PREDICCIÓN BIOINFORMÁTICA Y VALID
Page 30 and 31:
Page 32 and 33:
PACHECO CASTILLO, N.C., CÁRDENAS G
Page 34 and 35:
Page 36 and 37:
SANDOVAL-GÍO, J.J., RODRÍGUEZ-FUE
Page 38 and 39:
DETERMINACIÓN DEL ESTADO TRÓFICO
Page 40 and 41:
Page 42 and 43:
VELÁZQUEZ KÚ, V.N., QUIJANO-AVILA
Page 44 and 45:
Page 46 and 47:
PÉREZ DÍAZ, M.I., BERMEO FERNANDE
Page 48 and 49:
Page 50 and 51:
CEBALLOS, E., GIORGANA, J., RODRÍG
Page 52 and 53:
RELACIÓN ENTRE EL ESTRÉS POR ALUM
Page 54 and 55:
Page 56 and 57:
ÁLVAREZ, I., ANCONA, W., LIZAMA, G
Page 58 and 59:
DETECCIÓN DE LA PRESENCIA DE PYTHI
Page 60 and 61:
Page 62 and 63:
BAAS BAAS, C., NAHUAT-DZIB, S., GIO
Page 64 and 65:
MADURACIÓN Y GERMINACIÓN IN VITRO
Page 66 and 67:
Page 68 and 69:
LÓPEZ-GÓMEZ, P., ESCOBEDO-GRACIAM
Page 70 and 71:
Page 72 and 73:
LÓPEZ-GÓMEZ, P., ESCOBEDO-GRACIAM
Page 74 and 75:
Page 76 and 77:
CHI CHI, L.C., BARREDO POOL, F.A.,
Page 78 and 79:
REGENERACIÓN DE PLANTAS A PARTIR D
Page 80 and 81:
REGENERACIÓN DE PLANTAS A PARTIR D
Page 82 and 83:
MICROPROPAGACIÓN DE CLONAS REGENER
Page 84 and 85:
Page 86 and 87:
EK-CEN, A., TORRES-CALZADA, C.G., Y
Page 88 and 89:
ESTABLECIMIENTO DE UN CULTIVO PRIMA
Page 90 and 91:
Page 92 and 93:
CÓRDOVA-DÁVALOS, L.E., ESCOBEDO-C
Page 94 and 95:
Page 96 and 97:
FRANCO-MONSREAL, J., RODRÍGUEZ-LÓ
Page 98 and 99:
EVALUACIÓN DE LA SITUACIÓN NUTRIC
Page 100 and 101:
Page 102 and 103:
FRANCO-MONSREAL, J., HERNÁNDEZ-HUC
Page 104 and 105:
EVALUACIÓN DE LA SITUACIÓN NUTRIC
Page 106 and 107:
Page 108 and 109:
mg EAG/kg Bs % de Inhibición de DP
Page 110 and 111:
Page 112 and 113:
MARTÍNEZ-MORALES, M., COVARRUBIAS-
Page 114 and 115:
CARACTERIZACION Y ANALISIS SENSORIA
Page 116 and 117:
CARACTERIZACION Y ANALISIS SENSORIA
Page 118 and 119:
DETERMINACION DEL PODER EDULCORANTE
Page 120 and 121:
Page 122 and 123:
RAMÍREZ-BENÍTEZ, J.E., CAB-BAQUEI
Page 124 and 125:
TRATAMIENTO ENZIMÁTICO Y MICROBIAN
Page 126 and 127:
Page 128 and 129:
Page 130 and 131:
Page 132 and 133:
Page 134 and 135:
Page 136 and 137:
PASOS-CARBALLO, L.A., MONTALVO-MOLI
Page 138 and 139:
meq/Kg ESTABILIDAD OXIDATIVA DEL AC
Page 140 and 141:
Page 142 and 143:
Rendimiento (L/ton) Concentración
Page 144 and 145:
Page 146 and 147:
MUNGUÍA AGUILAR, D., ALATRISTE MON
Page 148 and 149: ARTÍCULO DE INVESTIGACIÓN BIOTECN
Page 150 and 151: FERNÁNDEZ-SÁNCHEZ R., TAMAYO-ORDO
Page 152 and 153: PAPEL DE LA PRODUCCIÓN DE ÁCIDO O
Page 154 and 155: ESTUDIO DE LA DINÁMICA MICROBIANA
Page 156 and 157: ESTUDIO DE LA CAPACIDAD DE PRODUCCI
Page 158 and 159: INMUNOCITOLOCALIZACIÓN DE UNA PROT
Page 160 and 161: ANÁLISIS DE LA REDUNDANCIA GÉNICA
Page 162 and 163: NUEVOS REPORTES DE HONGOS MICORRIZ
Page 164 and 165: COMUNICACIÓN CORTA BIOTECNOLOGÍA
Page 174 and 175: HÁBITOS ALIMENTICIOS E INFECCIÓN
Page 176 and 177: ESTUDIO TEÓRICO DE LA MICROSOLVATA
Page 178 and 179: SISTEMA DE REHABILITACIÓN METACARP
Page 180 and 181: CARACTERIZACIÓN DE BACTERIAS NATIV
Page 182 and 183: IDENTIFICACIÓN POR UPLC-QTOF DE CO
Page 184 and 185: IDENTIFICACIÓN POR UPLC-QTOF DE CO
Page 200 and 201: Ln (peso fresco) PRODUCCIÓN DE BIO
Page 208 and 209: REVISTA DEL CENTRO DE GRADUADOS E I
show all

RCGI V31 N63

Create successful ePaper yourself

Delete template?

Save as template?