RCGI V31 N63
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DETECCIÓN DE ÁCIDO BETULÍNICO Y URECHITOLES EN LAS RAÍCES TRANSFORMADAS CON EL GEN DE LA PROTEÍNA ROJA FLUORESCENTE DE PENTALINON<br />
ANDRIEUXII<br />
Debido a que Pentalinon andrieuxii produce bajas cantidades<br />
de estos metabolitos y que la especie es susceptible a la<br />
transformación vía Agrobacterium (Yam Puc, 2012), se ha<br />
logrado la obtención de raíces peludas, a partir de explantes<br />
de hojas, hipocótilos y raíces, que podrían ser útiles para<br />
aumentar su producción in vitro y elucidar los tejidos que<br />
biosintetizan al AB y U.<br />
(Hexano/ Diclorometano/Acetona) (6/2/2 V/V), se puede<br />
observar en la Figura 1, la presencia de AB en las líneas de<br />
raíces, al igual que en los respectivos medios líquidos,<br />
aunque se puede visualizar con mayor facilidad en las raíces,<br />
esto tal vez se debe a que hay mayor cantidad de AB en las<br />
raíces que en los medios. Es notable la ausencia de urechitol<br />
en todas las muestras.<br />
En este trabajo se pretende identificar la línea de raíces<br />
transformada que genere la presencia de uno o ambos<br />
metabolitos secundarios, dando paso así en futuras<br />
evaluaciones, obtener suficiente biomasa para su extracción<br />
y purificación. En el caso de los urechitoles permitiría<br />
obtener suficientes cantidades para probar su actividad<br />
biológica contra microorganismos y parásitos evitando de<br />
esta forma el exterminio de las poblaciones silvestres.<br />
MATERIAL Y METODOS<br />
El material vegetal con el que se trabajó fueron tres líneas de<br />
raíces a partir de los explantes de hojas, hipocótilos y raíces<br />
transformadas con la cepa ATCC15834 RFP de<br />
Agrobacterium rhizogenes utilizando como marcador el gen<br />
de la proteína fluorescente roja las cuales fueron inducidas y<br />
caracterizadas por May Mendoza, (2016).<br />
Las raíces transformadas de cada línea de un mes de edad<br />
fueron lavadas con agua destilada y secadas en una<br />
liofilizadora por tres días a -45°C. Las muestras secas se<br />
maceraron con N 2 líquido para después dejarlas en reposo<br />
con metanol. Se trataron las muestras con diclorometano para<br />
posteriormente realizar la cromatografía en capa delgada.<br />
En cuanto a la extracción del medio líquido de las líneas<br />
celulares, se realizó una bipartición líquido-líquido<br />
realizando los mismos pasos mencionados para la obtención<br />
de los extractos para su posterior uso en cromatografía en<br />
capa delgada.<br />
Para la detección del compuesto ácido betulínico (AB)<br />
mediante cromatografía, se corrió la muestra bajo el sistema<br />
de elución de Hx/CH2Cl2/An (Hexano/<br />
Diclorometano/Acetona) (6/2/2 V/V) como eluyentes<br />
utilizando un cristalizador, una vez terminado este, se reveló<br />
usando el agente revelador ácido fosfomolíbdico, seguida de<br />
un calentamiento a 100°C con una pistola de aire para la<br />
visualización del ácido betulínico de acuerdo a un estándar<br />
de sigma.<br />
Para la detección de urechitol se usó el sistema de elución<br />
(fase móvil) de AcOEt/Hx/MeOH (Acetato de etilo/ Hexano/<br />
Metanol) a (7.6/2/0.4) bajo los mismos pasos mencionados.<br />
RESULTADOS Y DISCUSIÓN<br />
La CCD (Cromatografía en Capa Delgada) permitió<br />
determinar la presencia de ácido betulínico y urechitol. Se<br />
empleó el sistema de elución para AB: Hx/CH 2 Cl 2 /An<br />
Figura 2. Perfil cromatográfico por CCD de las fracciones de polaridad<br />
media para AB en las líneas de raíces. (Hoja, hipocótilo y raíz con sus<br />
respectivos extractos de medio líquido) utilizando el sistema de elución<br />
HX:CH 2 Cl 2 :An (6/2/2).<br />
En la Figura 2, se visualiza que no hay presencia de urechitol<br />
a pesar que se corrió la placa con las mismas muestras<br />
utilizando el sistema indicado para urechitol,<br />
AcOEt:Hx:MeOH (6/2/2), solamente se visualizó<br />
nuevamente la presencia de AB en las muestras.<br />
Figura 3. Perfil cromatográfico por CCD de las fracciones de polaridad<br />
media para UR en las líneas de raíces. (Hoja, hipocótilo y raíz con sus<br />
respectivos extractos de medio líquido) utilizando el sistema de elución<br />
AcOEt:Hx:MeOH (6/2/2).<br />
Para confirmar la presencia de AB se realizó una<br />
cocromatrografia utilizando el estándar de ácido betulínico y<br />
la muestra elegida al azar (LBHi) con el sistema empleado<br />
para el caso de este metabolito; HX:CH2Cl2:An (6:2:2).<br />
Como se puede visualizar en la Figura 3, efectivamente se<br />
trata de AB ya que no hubo diferencia en cuanto a la corrida<br />
en la placa, están a la misma distancia.<br />
Se identificó AB en las raíces transformadas obtenidas a<br />
partir de los tres explantes, pero la ausencia de urechitoles en<br />
las tres líneas de raíces transformadas.<br />
En los trabajos realizados por Ramírez Albores (2016) con<br />
plantas transformadas regeneradas a partir de hipocótilo, y<br />
Jiménez Aguilar (2016) con plantas a partir de hoja, ambas<br />
REVISTA DEL CENTRO DE GRADUADOS E INVESTIGACIÓN. INSTITUTO TECNOLÓGICO MÉRIDA Vol. 31 NÚM. 63 59