Candida albicans-induzierte Genexpression in primären ... - OPUS
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3.7 Enzyme-l<strong>in</strong>ked Immunosorbent Assay (ELISA)<br />
Zum Nachweis von CXCL8 im Zellkulturüberstand verschiedener Zellen wurden<br />
enzymgekoppelte Immunnachweise durchgeführt. Dafür wurde der<br />
Zellkulturüberstand nach Ablauf der Stimulationszeit <strong>in</strong> e<strong>in</strong> Mikrozentrifugenröhrchen<br />
überführt, zur Abtrennung von eventuell enthaltenen Zellen und Zellbestandteilen bei<br />
5000 rpm zentrifugiert und bis zur weiteren Verwendung bei -20°C gelagert. Die<br />
Konzentration von CXCL8 <strong>in</strong> diesen Proben wurde mit dem kommerziell erhältlichen<br />
BD OptEIA human IL-8 ELISA Set (BD Pharm<strong>in</strong>gen, Frankl<strong>in</strong> Lakes, USA) nach den<br />
Angaben des Herstellers gemessen. Dabei wurde CXCL8 von spezifischen<br />
Antikörpern auf der Oberfläche e<strong>in</strong>er Mikrotiterplatte gebunden und durch e<strong>in</strong>en<br />
Detektionskomplex nachgewiesen. Der Komplex wurde mit Hilfe e<strong>in</strong>er Farbreaktion<br />
am ELISA-Reader quantitativ über den Vergleich mit e<strong>in</strong>er <strong>in</strong>ternen<br />
Standardkonzentrationsreihe ausgewertet. Das gleiche Pr<strong>in</strong>zip wurde zur<br />
Quantifizierung von CCL20 (MIP-3α) <strong>in</strong> Totalzelllysaten mittels Duo Set human MIP-<br />
3α ELISA Development System (R&D, M<strong>in</strong>neapolis, USA) angewendet. Die durch<br />
ELISA erhaltenen Werte wurden auf den Prote<strong>in</strong>gehalt der Proben normiert.<br />
Alle Proben wurden immer m<strong>in</strong>destens <strong>in</strong> Doppelbestimmungen analysiert und die<br />
erhaltenen Werte auf unstimulierte Kontrollen bezogen dargestellt.<br />
3.8 Prote<strong>in</strong>-Aktivierungsassay (Immunkomplex-K<strong>in</strong>aseassay)<br />
Pr<strong>in</strong>zip: K<strong>in</strong>asen übertragen γ-Phosphatreste von Adenos<strong>in</strong>triphosphat (ATP) auf<br />
Zielmoleküle. Die enzymatische Aktivität von K<strong>in</strong>asen lässt sich messen, <strong>in</strong>dem man<br />
die Übertragung von radioaktiv markiertem [γ 32 -P-] ATP auf spezifische Substrate<br />
quantitativ bestimmt. In der Praxis wird die zu untersuchende K<strong>in</strong>ase zunächst mit<br />
spezifischen Antikörpern aus den Zelllysaten immunpräzipitiert. Nach der<br />
Präzipitation wird die K<strong>in</strong>ase dann <strong>in</strong> Anwesenheit von radioaktivem [γ 32 -P-] ATP mit<br />
e<strong>in</strong>em spezifischen Substrat <strong>in</strong>kubiert und die E<strong>in</strong>baurate von radioaktivem 32 P <strong>in</strong> das<br />
Substratmolekül durch Autoradiographie gemessen.<br />
Durchführung: HUVEC wurden bis zum Erreichen e<strong>in</strong>es Konfluenzgrades von<br />
70-80 % kultiviert. Dann wurden sie wie <strong>in</strong> Abschnitt 3.1.4 beschrieben mit<br />
C. <strong>albicans</strong> bzw. TNFα für die angegebenen Zeitperioden stimuliert. Anschließend<br />
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