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grupo control sin tratar para permitir conocer los cambios naturales en las
cuentas de huevos durante la prueba ( Jabbar et al., 2006). Un mínimo de 5
gramos de heces deberán ser colectados directamente del recto de cada
animal. Las muestras deben ser puestas en recipientes individuales sellados y
ser enviados rápidamente al laboratorio para el conteo de huevos. Si las
muestras restantes de heces son requeridas para la elaboración de cultivos
para la obtención e identificación de especies de estadios larvarios las
muestras no deben ser almacenadas a 4 C ya que puede afectar la eclosión de
algunas especies como Haemonchus contortus.
Si el promedio de la cuenta de
huevos por grupo se encuentra por debajo de 150 hpg, el objetivo de la
evaluación de la resistencia no será confiable. El conteo promedio del hpg por
debajo de 150 puede ser común en ovinos adultos. En cuanto a los
tratamientos se recomienda que los animales sean tratados con un
antihelmíntico de acuerdo a las indicaciones y dosis recomendaciones por el
fabricante de acuerdo a la dosis en miligramos por k de peso (para propósitos
de investigación) o de acuerdo al peso de los animales más pesados del grupo
(para diagnóstico veterinario). Las muestras deben ser colectadas de 10 a 14
días después del tratamiento (Coles et al., 1992) ; aunque esto dependerá del
grupo de antihelmíntico que se vaya a evaluar. Por ejemplo, si se va a evaluar
Levamisol, se recomienda tomar la segunda muestra entre los 3 y los 7 días
postratamiento; aunque algunos autores recomiendan y justifican
ampliamente que la muestra de heces sea tomada después del día 7
(Grimshaw et al., 1996). Para el caso de derivados de Benzimidazoles entre 8 y
10 días y si se trata de Lactonas macrocíclicas entre 14 y 17 días (Coles et al.,
2006).
Asimismo, se recomienda llevar a cabo el conteo de huevos por g de heces
mediante una técnica de McMaster modificada en la que se pesan e g de heces
en un recipiente adecuado. Se agregan 42 mL de agua y se hunden por un
período de entre unos minutos y una hora hasta que las heces de
reblandezcan. Se lleva a cabo una homogeneización usando un agitador o una
cuchara hasta romper los péllets de heces. Tan pronto como sea después de
haber tomado las muestras, el material es tamizado en una coladera de 100
mallas (abertura de 0.15 mm) en un tamiz de 20 cm de diámetro en un vaso o un
recipiente equivalente. El líquido restante se mezcla y se vierten 15 ml en un
tubo de centrífuga de 17 ml. Se centrifuga durante 2 minutos a 300Xg
(Aproximadamente 1500 rpm) en una centrífuga convencional y se succiona o
se decanta suavemente el sobrenadante. Se agita el tubo para aflojar el
sedimento, luego se adiciona una solución saturada de cloruro de sodio hasta
dar el mismo volumen anterior (15 mL). El tubo se deberá invertir cinco o seis
veces e inmediatamente tomar una muestra con una pipeta Pasteur y llenar la
cámara de McMaster. Repetir el proceso de inversión y llenar la segunda
cámara de McMaster. Los huevos son contados utilizando un microscopio de
luz con el objetivo 40X por debajo de la primer laminilla que conforma la cámara
de McMaster justo debajo de la graduación (en donde existe un volumen de 0.3
ml). Se multiplica el número de huevos dentro de los canales marcados para tal
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