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Abrir - Bienvenidos a la Biblioteca del INIFAP - Instituto ...

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15. Repetir los pasos 8-11 hasta que se obtenga una fase acuosa c<strong>la</strong>ra.<br />

Estos <strong>la</strong>vados son muy importantes cuando se extrae ADN de sangre<br />

ya que los eritrocitos contienen mucha hemoglobina que es difícil de<br />

eliminar.<br />

16. Precipitar el ADN de <strong>la</strong> fase acuosa obtenida mezclándo<strong>la</strong> con 2<br />

volúmenes de etanol absoluto frío e incubar en CO2 sólido por cinco<br />

minutos. También se puede incubar a -20 °C toda <strong>la</strong> noche o se puede<br />

incubar <strong>la</strong> muestra a -70 °C por un par de horas.<br />

17. Centrifugar <strong>la</strong>s muestras a máxima velocidad por 30 minutos a 4º C. El<br />

ADN precipitado, usualmente invisible antes de <strong>la</strong> centrifugación,<br />

forma una pastil<strong>la</strong> al fondo y a los <strong>la</strong>dos <strong>del</strong> tubo.<br />

18. Decantar el sobrenadante muy cuidadosamente para no perder <strong>la</strong><br />

pastil<strong>la</strong>.<br />

19. Lavar elADN una vez con 500 μl de etanol al 70%.<br />

20. Mezc<strong>la</strong>r <strong>la</strong>s muestras con un vortex y centrifugar máxima velocidad<br />

por 10 minutos a 4°C.<br />

Para disolver el ADN:<br />

21. Secar <strong>la</strong> pastil<strong>la</strong> brevemente por 15 a 20 minutos en una campana de<br />

flujo <strong>la</strong>minar o bien en un una centrífuga al vacío. Secar demasiado el<br />

ADN dificultará <strong>la</strong> re-suspensión posterior de este (Bartlett y White<br />

2003).<br />

22. Disolver el ADN en agua libre de DNasas pasándolo varias veces por<br />

una punta de micro-pipeta, e incubándolo por 10 min a 55°C.<br />

23. Determinar <strong>la</strong> cantidad deADN por espectrofotometría.<br />

Protocolo 4.<br />

Pasos para <strong>la</strong> extracción de ADN de sangre infectada con Babesia spp.,<br />

mediante el kit comercial Wizard® SV Genomic DNA Purification System<br />

de Promega.<br />

1. La sangre infectada de debe obtener siempre con anticoagu<strong>la</strong>nte en<br />

bolsa o tubos, o bien defibrinada con per<strong>la</strong>s de vidrio. Vaciar <strong>la</strong> sangre<br />

a tubos de centrífuga de 15 o 50 ml y centrifugar<strong>la</strong> a 1340 g por 15-25<br />

minutos, desechar el p<strong>la</strong>sma y <strong>la</strong>s célu<strong>la</strong>s b<strong>la</strong>ncas y resuspender el<br />

paquete de eritrocitos conteniendo los parásitos en PBS 1X y se<br />

conge<strong>la</strong> a -20 °C o -70 °C.<br />

2. Al siguiente día desconge<strong>la</strong>r <strong>la</strong> muestra y centrifugar<strong>la</strong> a 3500 rpm por<br />

25 minutos a 4°C. Se retira el sobrenadante y <strong>la</strong> pastil<strong>la</strong> se vuelve a<br />

suspender en PBS. El proceso se repite hasta que <strong>la</strong> pastil<strong>la</strong> sea de<br />

color gris, <strong>la</strong> cual contendrá pocas membranas de eritrocitos y<br />

mayormente parásitos de Babesia.<br />

3. Tomar 200 μl de esta pastil<strong>la</strong> y mercarlos con 150 μl <strong>del</strong> búfer de lisis<br />

<strong>del</strong> kit y se mezc<strong>la</strong> por pipeteo.<br />

4. Transferir <strong>la</strong> muestra lisada a una columna <strong>del</strong> kit <strong>la</strong> cual se coloca en<br />

un tubo colector (Wizard® SV MinicolumnAssembly).<br />

5. Centrifugar <strong>la</strong> muestra a 13,000 g por 3 minutos.<br />

6. Remover <strong>la</strong> columna <strong>del</strong> tubo colector y desechar el líquido <strong>del</strong> tubo<br />

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