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15. Repetir los pasos 8-11 hasta que se obtenga una fase acuosa c<strong>la</strong>ra.<br />
Estos <strong>la</strong>vados son muy importantes cuando se extrae ADN de sangre<br />
ya que los eritrocitos contienen mucha hemoglobina que es difícil de<br />
eliminar.<br />
16. Precipitar el ADN de <strong>la</strong> fase acuosa obtenida mezclándo<strong>la</strong> con 2<br />
volúmenes de etanol absoluto frío e incubar en CO2 sólido por cinco<br />
minutos. También se puede incubar a -20 °C toda <strong>la</strong> noche o se puede<br />
incubar <strong>la</strong> muestra a -70 °C por un par de horas.<br />
17. Centrifugar <strong>la</strong>s muestras a máxima velocidad por 30 minutos a 4º C. El<br />
ADN precipitado, usualmente invisible antes de <strong>la</strong> centrifugación,<br />
forma una pastil<strong>la</strong> al fondo y a los <strong>la</strong>dos <strong>del</strong> tubo.<br />
18. Decantar el sobrenadante muy cuidadosamente para no perder <strong>la</strong><br />
pastil<strong>la</strong>.<br />
19. Lavar elADN una vez con 500 μl de etanol al 70%.<br />
20. Mezc<strong>la</strong>r <strong>la</strong>s muestras con un vortex y centrifugar máxima velocidad<br />
por 10 minutos a 4°C.<br />
Para disolver el ADN:<br />
21. Secar <strong>la</strong> pastil<strong>la</strong> brevemente por 15 a 20 minutos en una campana de<br />
flujo <strong>la</strong>minar o bien en un una centrífuga al vacío. Secar demasiado el<br />
ADN dificultará <strong>la</strong> re-suspensión posterior de este (Bartlett y White<br />
2003).<br />
22. Disolver el ADN en agua libre de DNasas pasándolo varias veces por<br />
una punta de micro-pipeta, e incubándolo por 10 min a 55°C.<br />
23. Determinar <strong>la</strong> cantidad deADN por espectrofotometría.<br />
Protocolo 4.<br />
Pasos para <strong>la</strong> extracción de ADN de sangre infectada con Babesia spp.,<br />
mediante el kit comercial Wizard® SV Genomic DNA Purification System<br />
de Promega.<br />
1. La sangre infectada de debe obtener siempre con anticoagu<strong>la</strong>nte en<br />
bolsa o tubos, o bien defibrinada con per<strong>la</strong>s de vidrio. Vaciar <strong>la</strong> sangre<br />
a tubos de centrífuga de 15 o 50 ml y centrifugar<strong>la</strong> a 1340 g por 15-25<br />
minutos, desechar el p<strong>la</strong>sma y <strong>la</strong>s célu<strong>la</strong>s b<strong>la</strong>ncas y resuspender el<br />
paquete de eritrocitos conteniendo los parásitos en PBS 1X y se<br />
conge<strong>la</strong> a -20 °C o -70 °C.<br />
2. Al siguiente día desconge<strong>la</strong>r <strong>la</strong> muestra y centrifugar<strong>la</strong> a 3500 rpm por<br />
25 minutos a 4°C. Se retira el sobrenadante y <strong>la</strong> pastil<strong>la</strong> se vuelve a<br />
suspender en PBS. El proceso se repite hasta que <strong>la</strong> pastil<strong>la</strong> sea de<br />
color gris, <strong>la</strong> cual contendrá pocas membranas de eritrocitos y<br />
mayormente parásitos de Babesia.<br />
3. Tomar 200 μl de esta pastil<strong>la</strong> y mercarlos con 150 μl <strong>del</strong> búfer de lisis<br />
<strong>del</strong> kit y se mezc<strong>la</strong> por pipeteo.<br />
4. Transferir <strong>la</strong> muestra lisada a una columna <strong>del</strong> kit <strong>la</strong> cual se coloca en<br />
un tubo colector (Wizard® SV MinicolumnAssembly).<br />
5. Centrifugar <strong>la</strong> muestra a 13,000 g por 3 minutos.<br />
6. Remover <strong>la</strong> columna <strong>del</strong> tubo colector y desechar el líquido <strong>del</strong> tubo<br />
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