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colector. Se vuelve a ensamb<strong>la</strong>r <strong>la</strong> columna al tubo colector.<br />
7. Adicionar 650 μl a <strong>la</strong> columna de <strong>la</strong> solución de <strong>la</strong>vado <strong>del</strong> kit (que ya<br />
debe contener etanol) y centrifugar <strong>la</strong> muestra a 13,000 g por 1<br />
minuto. Remover <strong>la</strong> columna <strong>del</strong> tubo colector y desechar el líquido<br />
<strong>del</strong> tubo colector. Volver a ensamb<strong>la</strong>r <strong>la</strong> columna al tubo colector y<br />
repetir este paso para un total de cuatro veces.<br />
8. Desechar el líquido <strong>del</strong> tubo colector, re-ensamb<strong>la</strong>r <strong>la</strong> columna y<br />
centrifugar por 2 minutos <strong>la</strong> muestra a 13,000 g, esto con objeto de<br />
secar <strong>la</strong> matriz de unión de <strong>la</strong> columna.<br />
9. Transferir <strong>la</strong> mini-columna a un nuevo tubo de 1.5 ml. Adicionar 30 μl<br />
de agua libre de nucleasas que debe estar a temperatura ambiente.<br />
Incubar por 2 minutos a temperatura ambiente.<br />
10. Centrifugar <strong>la</strong> columna ensamb<strong>la</strong>da en el nuevo tubo colector a<br />
13,000 g por 1 minuto.<br />
11. Sin desechar el ADN eluido, agregar otros 10 μl de agua libre de<br />
nucleasas a <strong>la</strong> columna y centrifugar <strong>la</strong> columna ensamb<strong>la</strong>da en el<br />
nuevo tubo colector a 13,000 g por 1 minuto. El volumen total eluido es<br />
de 40 μl.<br />
12. Remover <strong>la</strong> columna y desechar<strong>la</strong>, y el ADN eluido se utiliza para<br />
determinar <strong>la</strong> cantidad deADN por espectrofotometría.<br />
13. Guardar a -20 ó -70 °C.<br />
Protocolo 5.<br />
Pasos para <strong>la</strong> extracción de ADN de sangre infectada con Babesia spp.,<br />
mediante el kit comercial Puregene DNA Purification System (QIAGEN).<br />
1.<br />
El paso uno es idéntico al paso 2 <strong>del</strong> protocolo 4.<br />
2.<br />
El paso dos es idéntico al paso dos <strong>del</strong> protozoo 4.<br />
3. Tomar 300 μl de <strong>la</strong> pastil<strong>la</strong> formada en el paso 2 y mezc<strong>la</strong>rlos con 900<br />
μl de <strong>la</strong> solución de lisis de célu<strong>la</strong>s rojas sanguíneas (RBC) <strong>del</strong> kit.<br />
Incubar por un minuto a temperatura ambiente; invertir el tubo<br />
suavemente diez veces durante <strong>la</strong> incubación.<br />
4. Centrifugar por 20 segundos a 13,000-16,000 x g. Remover <strong>la</strong> mayor<br />
cantidad de sobrenadante posible con una pipeta dejando<br />
5.<br />
aproximadamente unos 10-20 μl de líquido residual encima de <strong>la</strong><br />
pastil<strong>la</strong>.<br />
Vortexear vigorosamente por 10 segundos para resuspender <strong>la</strong><br />
pastil<strong>la</strong> en el líquido residual; esto facilita mucho <strong>la</strong> lisis celu<strong>la</strong>r en el<br />
paso siguiente. No debe permanecer <strong>la</strong> pastil<strong>la</strong> de célu<strong>la</strong>s después de<br />
este paso.<br />
6. Adicionar 300 μl de <strong>la</strong> solución de lisis celu<strong>la</strong>r <strong>del</strong> kit a <strong>la</strong>s célu<strong>la</strong>s<br />
resuspendidas y pipetear varias veces para lisar <strong>la</strong>s célu<strong>la</strong>s. Las<br />
muestras son estables en esta solución de lisis celu<strong>la</strong>r por hasta dos<br />
años a temperatura ambiente.<br />
7. Se puede dar un tratamiento con RNasa que es opcional.Aquí hay que<br />
adicionar 1.5 μl de solución de RNasa A al lisado celu<strong>la</strong>r. Mezc<strong>la</strong>r <strong>la</strong><br />
muestra invirtiendo el tubo 25 veces y se incuba a 37°C por 15<br />
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