Abrir - Bienvenidos a la Biblioteca del INIFAP - Instituto ...

More documents

Recommendations

Info

Figura 7.1. Porcentaje de desarrollo de huevos de H. contortus resistentes a Bencimidazoles. Figura 7. 2. Porcentaje de evolución de huevos de H. contortus susceptibles a Bencimidazoles. 133
Interpretación de la prueba En la Figura 7.1, se puede apreciar que a partir de la concentración 0.004, el porcentaje de desarrollo embrionario se eleva considerablemente, dando un resultado positivo a resistencia antihelmíntica. En la gráfica 2, por el contrario, se aprecia que solo hasta una concentración muy baja 0.0006, la curva ligeramente se eleva, dando un resultado negativo a esta prueba (López Arellano, 2004). Otra manera de realizar la prueba es utilizando placas de microtitulación de 48 pozos. Las drogas pueden ser diluidas en DMSO (Dimetil Sulfóxido). El número de huevos embrionados y larvas eclosionadas se cuentan bajo el microscopio. Es necesario, estimar una dosis discriminatoria más que calcular una dosis Letal , con lo que la sensibilidad de la prueba puede ser 50 sustancialmente mejorada y ofrece una estimación cuantitativa del porcentaje de huevos resistentes en las muestras fecales. La dosis discriminatoria es aquella que mata al 99% de los huevos susceptibles con lo que los huevos que logran eclosionar a esta dosis son considerados resistentes (Coles et al., 2006). De forma similar a la prueba anterior, los resultados se obtienen al comparar los promedios de eclosión de huevos en una serie de placas tratadas con el producto a evaluar, con respecto a un control similar, sin recibir el antihelmíntico para ser considerado como control de comparación. Por otro lado, a pesar de que la estimación de una dosis discriminatoria aumenta la sensibilidad y simplifica la prueba, esta no es confiable para detectar resistencia a Lactonas Macrocíclicas en nematodos de bovinos y ovinos ya que los radios de resistencia son muy pequeños (Gopal et al., 1999). 7.3.3. Prueba controlada in vivo Esta prueba es la más confiable y exacta para confirmar la presencia de resistencia antihelmíntica. El protocolo recomendado como guía para evaluar la eficacia de compuestos antihelmínticos publicado por la W.A. AVP . . ., puede ser utilizado y adaptado para determinar la resistencia antihelmíntica (Wood et al., 1995; Duncan et al., 2002). Esta prueba se sustenta en una comparación de la población parasitaria de parásitos adultos y larvas en hipobiósis entre dos grupos de animales, uno tratado con el antihelmíntico a evaluar a las dosis terapéuticas recomendadas por el fabricante y otro con un placebo, sin el antihelmíntico. Los resultados son obtenidos a través del sacrificio de los animales de ambos grupos para la obtención y cuantificación tanto de larvas en hipobiósis, dentro de la mucosa gástrica, como de parásitos adultos en los diferentes compartimentos gástricos. Los resultados son considerados con base en la comparación de las medias aritméticas entre ambos grupos. Para poder llevar a cabo esta prueba se requiere la utilización de animales, alimentación y un espacio para alojarlos; así como de personal para el manejo y cuidados de los animales, lo que significa una gran limitante desde el punto de vista económico. 134
Page 1 and 2:
DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES PARASI
Page 3 and 4:
DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES PARASI
Page 5 and 6:
Autores Jesús Antonio Álvarez Mar
Page 7 and 8:
PRÓLOGO El presente texto tiene co
Page 9 and 10:
14. Diagnóstico serológico de las
Page 11 and 12:
La condición ideal al aplicar una
Page 13 and 14:
que se presente; sensibilidad anal
Page 15 and 16:
técnicas coproparasitocópicas en
Page 17 and 18:
Literatura citada 1. Armbruster D,
Page 19 and 20:
2. Fundamentos de microscopia ópti
Page 21 and 22:
Ajuste de Enfoque Portaobjetos Cond
Page 23 and 24:
Objetivo Porta Espécimenes Condens
Page 25 and 26:
Figura 2.5. Partes de un microscopi
Page 27 and 28:
2.8. Preparación de especímenes L
Page 29 and 30:
Cuadro 4. Tinciones de muestras má
Page 31 and 32:
advenimiento de la fotografía digi
Page 33 and 34:
10. Kapitza HG. 1997. Microscopy fr
Page 35 and 36:
3. Coprología diagnóstica de helm
Page 37 and 38:
Solución 1 Tintura de merthiolate
Page 39 and 40:
Gradillas Centrífuga Microscopio c
Page 41 and 42:
Otras soluciones frecuentemente emp
Page 43 and 44:
mercurato de potasio. En nuestro me
Page 45 and 46:
-Completar con solución hasta la m
Page 47 and 48:
Infección baja 1/400 huevos por gr
Page 49 and 50:
homogenizado se obtiene las gotas n
Page 51 and 52:
6. Kilani M, Guillot J, Polack B, C
Page 53 and 54:
interpretación exacta de la copros
Page 55 and 56:
Procedimiento Se pesan 20 g de hece
Page 57 and 58:
es variable, siendo afectado por la
Page 59 and 60:
contaminación de pastos con larvas
Page 61 and 62:
4.4. Eliminación de las vainas de
Page 63 and 64:
Características morfológicas de l
Page 65 and 66:
4.5. Identificación de larvas infe
Page 67 and 68:
Arva infectante de Strongyloides sp
Page 69 and 70:
Larva infectante de Bunostomum spp
Page 71 and 72:
Larva infectante de Trichostrongylu
Page 73 and 74:
Larva infectante de Ostertagia - Te
Page 75 and 76:
Larva infectante de Mecistocirrus d
Page 77 and 78:
Figura 4.11. Larva infectante de Co
Page 79 and 80:
Figura 4.12. Larva infectante de Ha
Page 81 and 82:
Figura 4.13. Larva infectante de Ch
Page 83 and 84:
Figura 4.14. Larva infectante de Oe
Page 85 and 86:
ventral está posteriormente subdiv
Page 87 and 88:
Clave de identificación de larvas
Page 89 and 90:
Características morfométricas de
Page 91 and 92: Evaluación del estadio exógeno de
Page 93 and 94: 11. Liébano E, Vázquez V. (1989)
Page 95 and 96: 5. Necropsia e identificación de h
Page 97 and 98: 88 Figura 5.1. Representación esqu
Page 99 and 100: 90 fiigura 5.2. Localización de lo
Page 101 and 102: coladera y luego se procede a la co
Page 103 and 104: en la laringe de bovinos; mientras
Page 105 and 106: gancho en su terminación; el derec
Page 107 and 108: e) Mecistocirrus digitatus Este gé
Page 109 and 110: Figura 5.8. Algunas estructuras de
Page 111 and 112: i) Agriostomum vryburgi Esta especi
Page 113 and 114: Figura 5.13.- Morfología del extre
Page 115 and 116: N. battus: El macho mide de 10a13mm
Page 117 and 118: Figura 5.17. Morfología del extrem
Page 119 and 120: q) Dyctiocaulus spp. En este géner
Page 121 and 122: Los adultos tienen un aspecto de ve
Page 123 and 124: Figura 5.24. Ejemplar adulto de Thy
Page 125 and 126: Figura 5.27. Representación esquem
Page 127 and 128: 5. Campos R, Bautista R (editores).
Page 129 and 130: 29. Sánchez Manzano R.M., Alva S.I
Page 131 and 132: lugar, para ese efecto la prueba de
Page 133 and 134: Posteriormente se inicia la revisi
Page 135 and 136: 10.Quiróz RH. 1984. Parasitología
Page 137 and 138: verá reducida. El diagnóstico de
Page 139 and 140: grupo control sin tratar para permi
Page 141: nematodos. Hay varias maneras de ll
Page 145 and 146: 3. Incubar la muestra del tubo toda
Page 147 and 148: 11.Eddi, C. ; Caracostantologo, J.;
Page 149 and 150: 31.Sargison, N.D., Jackson, F., Bar
Page 151 and 152: Los movimientos bruscos provocan la
Page 153 and 154: Cuando se considera que los parási
Page 155 and 156: protozoarios, poseen localización
Page 157 and 158: f) Anaplasmosis En México, se ha i
Page 159 and 160: 14.Homer JM, Aguilar-Delfin I, Telf
Page 161 and 162: 9. Diagnóstico inmunológico y mol
Page 163 and 164: contaminación por helmintos en pro
Page 165 and 166: EXCRECIÓN/SECRECIÓN: Los producto
Page 167 and 168: 1:3000 y para animales de laborator
Page 169 and 170: 9.3. TÉCNICAS MOLECULARES La tecno
Page 171 and 172: 1. EJEMPLO: EXTRACCIÓN DNA/RNA UTI
Page 173 and 174: seguida por 15 min en congelación
Page 175 and 176: 7. Dawkins HJS, Spencer TL, 1989. T
Page 177 and 178: ANEXO I SOLUCIÓN SALINA AMORTIGUAD
Page 179 and 180: proporcional al número de molécul
Page 181 and 182: Figura 10.1. Preparación del froti
Page 183 and 184: loqueador y se incuba durante 30 mi
Page 185 and 186: Literatura citada 1. Bose R., Jorge
Page 187 and 188: 11. Extracción de ADN de hemopará
Page 189 and 190: quedan unos pocos residuos que hay
Page 191 and 192: los ácidos nucléicos (Scoles et a
Page 193 and 194:
año se coloca el mortero y el pist
Page 195 and 196:
15. Repetir los pasos 8-11 hasta qu
Page 197 and 198:
minutos. Nota: si se trabaja con mu
Page 199 and 200:
10. Moore, D. and D. Dowhan (1998).
Page 201 and 202:
12. Diagnóstico de babesiosis bovi
Page 203 and 204:
Para determinar la concentración d
Page 205 and 206:
6. Cantó GJ, EE Rojas, JA Álvarez
Page 207 and 208:
13. Diagnóstico de tricomonosis Ca
Page 209 and 210:
Figura 13.2. Ciclo biológico de Tr
Page 211 and 212:
Cuando las muestras deban enviarse
Page 213 and 214:
Para el control se sugieren las sig
Page 215 and 216:
16. Gookin JL, Birkenheuer AJ, Brei
Page 217 and 218:
Lecturas complementarias 1. Tricomo
Page 219 and 220:
Figura 14.3.1.Ciclo biológico de O
Page 221 and 222:
4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. Las c
Page 223 and 224:
absorbancia a 454 nm (cabras) 405 n
Page 225 and 226:
17. Goddard P, Bates P, Webster KA.
Page 227 and 228:
15. Preparación de soluciones com
Page 229 and 230:
identificación morfométrica. Azú
Page 231 and 232:
c) Carmín bórax de Granacher Carm
Page 233 and 234:
c) Xilol fenicado creosotado Xilol
Page 235 and 236:
) EDTA (0.5 M pH 8) Disodio EDTA2H2
Page 237 and 238:
9. Sonnenwirth AC, Jarett L. Métod
Page 239 and 240:
Cuadro 16.2. Pruebas de diagnóstic
Page 241 and 242:
Figura 16.2. Sinopsis del diagnóst
Page 243 and 244:
Literatura consultada 1. nd Baker D
Page 245 and 246:
22. Morilla GA, Bautista G CR. 1986
show all

Abrir - Bienvenidos a la Biblioteca del INIFAP - Instituto ...

Create successful ePaper yourself

Delete template?

Save as template?