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23.Smyth JD. 1994. Introduction to Animal Parasitology. Third edition. Cambridge University Press. New York, USA. 549. pp. 24.Soulsby EJ. 1987. Parasitología y enfermedades parasitarias de los animales domésticos. Interamericana, México, D.F. 25.Tamayo HM. (2006). Nematodos. Universidad Cátolica de Maule Talca. Chile. Obtenido de la red: http://www. Monografias.com 26.Taylor MA, Coop RL, Wall RL, Wall R. 2007. Veterinary Parasitology. Third Edition. Blackwell Pub. Edinburg, United Kingdom. 874 pp. 27.Thomas RJ. (1957). A comparative study of the infective larvae of Nematodirus species parasitic in sheep. Parasitology 47: 60-65. 28.Urquhart GM. 2001. Parasiotología veterinaria. Editorial Acribia, Zaragoza. España. 355 pp. 29.Vazquez PVM. (2004). Caracteristicas epidemiológicas de los nematodos gastroentericos de los ruminates. Diagnostico y control de los nematodos gastrointestinales de los ruminates en México. Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias, CENID-PAVET, México, pp.1-11. 30.Zajac AM, Conboy GA. 2006. Veterinary Clinical Parasitology. Blackwell Publishing,Ames, Iowa, USA. 305 pp. 85
5. Necropsia e identificación de helmintos del tracto gastroentérico de rumiantes Victor Manuel Vázquez Prats Carlos Ramón Bautista Garfias A. Sacrificio de animales B. Colecta de nematodos del aparato digestivo y pulmones a) Esófago y rumen b) Abomaso c) Intestino delgado d) Intestino grueso e) Hígado f) Pulmones C. Fijación, tinción y montaje de helmintos a) nematodos b) Cestodos y trematodos D. Identificación de nematodos a) Mammomononogamus spp. b) Gongylonema spp. c) Haemonchus spp. d) Ostertagia spp. e) Mecistocirrus digitatus f) Trichostrongylus spp. g) Toxocara vitulorum h) Strongyloides papillosus i) Agriostomum vryburgi j) Bunostomum spp. k) Gaigeria pachyscelis l) Cooperia spp. m) Nematodirus spp. n) Chabertia ovina ñ) Oesophagostomum spp.o) Trichuris spp. p) Skrjabinema ovis q) Dyctiocaulus spp. r) Protostrongylus rufescens s) Cystocaulus ocreatus t) Muellerius capillaris 86
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DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES PARASI
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Autores Jesús Antonio Álvarez Mar
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Solución 1 Tintura de merthiolate
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Gradillas Centrífuga Microscopio c
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Otras soluciones frecuentemente emp
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3. Incubar la muestra del tubo toda
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Los movimientos bruscos provocan la
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Cuando se considera que los parási
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1. EJEMPLO: EXTRACCIÓN DNA/RNA UTI
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seguida por 15 min en congelación
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ANEXO I SOLUCIÓN SALINA AMORTIGUAD
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loqueador y se incuba durante 30 mi
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11. Extracción de ADN de hemopará
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quedan unos pocos residuos que hay
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12. Diagnóstico de babesiosis bovi
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Para determinar la concentración d
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