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Figura 16.3. Sinopsis del diagnóstico de algunas parasitosis de caprinos utilizando este manuscrito. 16.3. Algunos laboratorios reconocidos de diagnóstico parasitológico veterinario CENID-PAVET del INIFAP, Carr. Fed. Cuernavaca-Cuautla No. 8534 Col. Progreso, Jiutepec, Estado de Morelos. C.P. 62550. Tel (777) 319-2848. CENAPA (SENASICA), Carr. Fed. Cuernavaca-Cuautla No. 8534 Col. Progreso, Jiutepec, Estado de Morelos. C.P. 62550. Tel. (55) 5905 1000 ext. 53117 Departamento de Parasitología, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, UNAM. Circuito Exterior, Ciudad Universitaria, Delegación Coyoacán, México, D.F. C.P. 04510. Tel. (55) 5622 5999 ext. 12 233
Literatura consultada 1. nd Baker DG. 2007. Flynn's Parasites of Laboratory Animals. 2 Edition. Blackwell Publishing,Ames Iowa, USA. 855 p. 2. Cringoli G, Rinaldi L, Veneziano V, Capelli G, Malone JB. A cross-sectional coprological survey of liver flukes in cattle and sheep from an area of the southern ItalianApennines. Vet Parasitol 108:137-143. 3. Coppieters W, Mes THM, Druet T, Farnir F, Tamma N, Schrooten C, Cornelissen AWCA, Georges M, Ploeger H. 2009. Mapping QTL influencing gastrointestinal nematode burden in Dutch Holstein-Friesian dairy cattle. BMC Genomics, 10:96 doi:10.1186/1471-2164-10-96 4. Charlier J, De Meulemeester L, Claerebout E, Williams D, Vercrysse J. 2008. Qualitative and quantitative evaluation of coprological and serological techniques for the diagnosis of fasciolosis in cattle. Vet Parasitol 153:44-51. 5. Diargie JD. 1987. The impact on production and mechanisms of pathogenesis of nematode infections in cattle and sheep. Int J Parasitol 17:453-463. 6. Eysker M. 1997. The sensitivity of the Baemann method for the diagnosis of primary Dyctiocaulus viviparus infections in calves. Vet parasitol 69:898-93. 7. Eysker M, Ploeger HW. 2000. Value of present diagnostic methods for gastrointestinal nematode infections in ruminants. Parasitology 120:S109- S119. 8. Foreyt WJ, Foreyt B. 2001. Veterinary Parasitology Reference Manual. Iowa State University Press, USA. 235 p. 9. Gasbarre LC, Leighton EA, Sonstegard T. 2001. Role of the bovine immune system and genome in resistance to gastrointestinal nematodes. Vet Parasitol 98:51-64. 10. Greiner M, Gardner A. 2000. Epidemiologic issues in the validation of veterinary diagnostic tests. Preventive Vet Med 45:3-22. 11. Gross SJ, Ryan WG, Ploeger HW. 1999. Anthelmintic treatment of adult dairy cows and the effect on milk production. Vet Rec 144:581-587. 234
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Autores Jesús Antonio Álvarez Mar
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PRÓLOGO El presente texto tiene co
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Solución 1 Tintura de merthiolate
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Gradillas Centrífuga Microscopio c
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Otras soluciones frecuentemente emp
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mercurato de potasio. En nuestro me
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Infección baja 1/400 huevos por gr
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Larva infectante de Bunostomum spp
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Larva infectante de Mecistocirrus d
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ventral está posteriormente subdiv
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Clave de identificación de larvas
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Características morfométricas de
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Evaluación del estadio exógeno de
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en la laringe de bovinos; mientras
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i) Agriostomum vryburgi Esta especi
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q) Dyctiocaulus spp. En este géner
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Interpretación de la prueba En la
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3. Incubar la muestra del tubo toda
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Los movimientos bruscos provocan la
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f) Anaplasmosis En México, se ha i
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9. Diagnóstico inmunológico y mol
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contaminación por helmintos en pro
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9.3. TÉCNICAS MOLECULARES La tecno
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1. EJEMPLO: EXTRACCIÓN DNA/RNA UTI
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seguida por 15 min en congelación
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7. Dawkins HJS, Spencer TL, 1989. T
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ANEXO I SOLUCIÓN SALINA AMORTIGUAD
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quedan unos pocos residuos que hay
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