12 ileri kurs1 - Kan Merkezleri ve Transfüzyon Derneği

daha duyarl›d›r. Baz› ›s›ya dirençli zarfs›z viruslar› da inaktive eder, ancak UVC’ye ra¤men HIV bulafl› bildirilmifltir.
Proteinler de zarar görebilmektedir. Çok ince tabakalar halinde plazmaya uygulanmas› gerekti¤inden pratik de¤ildir.
Baz› proteinlerde %30-40 kayba yola açar.
‹nactine (PEN 110):
TDP ve ES için denenmektedir. Biri nükleik asit, biri guaninin N-7 pozisyonu ile kovalent ba¤lanan iki fonksiyonel
ürünü olan kimyasal bir inaktivatördür. Nükleik asit halkas›n›n aç›lmas›na yol açar ve zincirin okunmas›n› engelleyen
bir stop sinyalinin oluflmas›na neden olur. ES lökositten ar›nd›r›ld›ktan sonra Inaktin eklenerek oda ›s›s›nda 6-24 saat
bekletilir. ‹fllemden sonra ES’nun y›kanarak art›k kimyasallar uzaklaflt›r›l›r ve additif solüsyon eklenerek saklan›r. Zarfl›
- zarfs›z viruslara, hücre içi patojenlere, bakterilere, protozoonlara ve lökositlere güçlü inaktivatör etkisi vard›r. Ancak
transfüzyon sonras› 35 ve 42. günlerde transfüze edilen eritrositlerin ömürlerinin %50 oran›nda k›sald›¤› saptanm›flt›r.
Bu durum kronik transfüzyon gerektiren hastalar için bir sorun oluflturabilir. Ticari kiti Vitex-Pall taraf›ndan
INACTINE System ad›yla haz›rlanm›flt›r.
FRALE (S-303):
ES için denenmektedir. S-303 bir psöralendir. Aktif k›sm› nükleik asitlere ba¤lan›r ve pH’y› de¤ifltirerek kimyasal
yolla etki eder. Art›k madde inaktif S-300’dür ve ES torbas›nda 42 gün kalan bir adsorban ile uzaklaflt›r›lmas› gerekir.
Zarfl›-zarfs›z viruslara, hücre içi patojenlere, bakterilere, protozoonlara ve lökositlere güçlü inaktivatör etkisi vard›r.
Eritrositlerde %3-5 kayba yol açsa da, eritrosit ömrünü k›saltmamaktad›r.
ES için Helinx/Intercept (Cerus-Baxter) ad›yla ticari bir kit olarak haz›rlanm›flt›r.
Gerek ‹nactine, gerekse FRALE’nin eritrosit yüzeyinde neoantijenler oluflturduklar›n›n ve bunlara karfl› da al›c›da antikorlar›n
geliflti¤inin gösterilmesi her iki sistemin önemli ve afl›lmas› gereken bir sak›ncas›d›r.
SONUÇ
Ulusal Kan Merkezleri ve Transfüzyon T›bb› Kursu XII - ‹leri Kurs
P‹ yöntemleri transfüzyonla mikroorganizma bulafl›n› ortadan kald›rmak gibi çok cazip görünen bir amaç için gelifltirilmifl
yöntemler olsa da henüz erken bir aflamas›nda oldu¤u söylenebilir. Günümüzde tüm bileflenlere uygulanabilecek,
standart bir yöntem yoktur. Özellikle bileflenler ayr›lmadan, tam kana uygulanabilecek bir yöntemin gelifltirilmesi
çok pratik olacakt›r. fiimdilik kullan›ma girmifl yöntemler TDP için metilen mavisi ve S/D ile inaktivasyon, çok daha
yeni olarak da TS için S-59 / UVA’d›r. Gelecek için en çok umut vadeden yöntem ise Riboflavin ile fotoinaktivasyon
olarak gözükmektedir. Bileflenin terapötik özelliklerinin tam korunmas›, toksisite, uygulama kolayl›¤› vs gibi halen
tam çözülememifl sorunlar mevcuttur. Ek olarak bu yöntemlerin tümü pahal› yöntemlerdir ve hiç birinin maliyet etkin
oldu¤u gösterilememifltir.
KAYNAKLAR
1. Busch MP, Kleinman SH, Nemo GJ. Current and emerging infectious risks of blood transfusions. JAMA 2003;
289: 959-962.
2. Morgenthaler JJ. New developments in plasma fraktionation and virus inactivation. Vox Sang 2000, 78(S2):
203-204.
3. Corash L. Inactivation of viruses, bacteria, protozoa and leukocytes in platelet and red cell concentrates. Vox
Sang 2000; 78(S2): 205-210.
4. Dodd RY. Pathogen inactivation: mechanisms of action and in vitro efficacy of various agents. Vox Sang 2002
83(S1): 267-270.
5. AuBuchon JP. Pathogen inactivation in cellular blood components: Clinical trials and implications of introduction
to transfusion medicine. Vox Sang 2002 83(S1): 271-275.
- 92 -