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Modèles transgéniques pour l'étude de la fonction ... - Epublications

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Groupe d'enzymes<br />

Sialyltransférase<br />

Fucosyltransférase<br />

Ga<strong>la</strong>ctosyltransférase<br />

N-acétylglucosaminyltransférase<br />

N-acétylga<strong>la</strong>ctosaminyltransférase<br />

Mannosyltransférase<br />

Sucre transféré<br />

Aci<strong>de</strong> N-acétylneuraminique<br />

Fucose<br />

Ga<strong>la</strong>ctose<br />

N-acétylglucosamine<br />

N-acétylga<strong>la</strong>ctosamine<br />

Mannose<br />

Tableau 1 : Les principales glycosyltransférases <strong>de</strong> vertébrés greffant <strong>de</strong>s sucres monosaccharidiques sur <strong>de</strong>s<br />

substrats mono- ou polysaccharidiques.<br />

A <strong>la</strong> série d’enzymes « c<strong>la</strong>ssiques » s’ajoutent <strong>de</strong>s enzymes plus singulières, telle que<br />

l’oligosaccharidyltransférase, qui utilise comme substrat donneur un oligosacchari<strong>de</strong> lié à une<br />

molécule <strong>de</strong> dolichol-phosphate, ultérieurement transféré sur une protéine au cours <strong>de</strong>s premières<br />

étapes <strong>de</strong> <strong>la</strong> biosynthèse <strong>de</strong>s N-glycannes, ou encore telles que les mannosyltransférases et<br />

glucosyltransférases, utilisant du mannose ou du glucose liés également au dolichol-phophate<br />

(Kornfeld and Kornfeld, 1985). Il existe aussi <strong>de</strong>s glycosyltransférases d’origine procaryote qui<br />

transfèrent <strong>de</strong>s sucres liés à l’un<strong>de</strong>caprényl-phosphate (Shaper and Shaper, 1992). Enfin,<br />

certaines glycosyltransférases sont en mesure <strong>de</strong> lier <strong>de</strong>s monosacchari<strong>de</strong>s à <strong>de</strong>s résidus Thr ou<br />

Ser, <strong>la</strong> protéine servant alors directement <strong>de</strong> substrat accepteur. C’est le cas <strong>pour</strong> certaines N-<br />

acétylga<strong>la</strong>ctosaminyltransférases, qui initient <strong>la</strong> synthèse <strong>de</strong>s O-glycannes, ainsi que <strong>pour</strong> <strong>de</strong>s<br />

enzymes plus récemment caractérisées, que sont les O-fucosyltransférases ou les O-N-<br />

acétylglucosaminyltransférases (Van <strong>de</strong>n Steen et al., 1998).<br />

Pour les glycoprotéines, <strong>de</strong>ux gran<strong>de</strong>s familles <strong>de</strong> glycannes ont donc été définies selon <strong>la</strong><br />

nature <strong>de</strong> <strong>la</strong> liaison covalente établie entre le glycanne et <strong>la</strong> partie peptidique : les N- et les O-<br />

glycannes. Les protéines N-glycosylées portent un glycanne sur l’atome d’azote <strong>de</strong> <strong>la</strong> chaîne<br />

<strong>la</strong>térale d’une asparagine comprise dans un motif consensus <strong>de</strong> type N-X-S/T (X pouvant être<br />

n’importe quel résidu autre que <strong>la</strong> proline). Les protéines O-glycosylées portent un<br />

monosacchari<strong>de</strong> ou un glycanne fixé par l’intermédiaire <strong>de</strong> l’atome d’oxygène <strong>de</strong> <strong>la</strong> chaîne<br />

<strong>la</strong>térale d’une sérine ou d’une thréonine. Ces <strong>de</strong>ux types <strong>de</strong> glycosy<strong>la</strong>tion peuvent se retrouver<br />

simultanément sur une même protéine (comme par exemple, les récepteurs <strong>de</strong> <strong>la</strong> famille Notch).<br />

79<br />

Substrat<br />

donneur<br />

CMP-NeuAc<br />

GDP-Fuc<br />

UDP-Gal<br />

UDP-GlcNac<br />

UDP-GalNac<br />

GDP-Man<br />

Liaisons formées entre sucre<br />

donneur et sucre accepteur<br />

α2,3 ; α2,6 ; α2,8<br />

α1,2 ; α1,3 ; α1,4 ; α1,6<br />

β1,3 ; β1,4 ; α1,3<br />

β1,2 ; β1,4 ; β1,6<br />

α1,3 ; β1,4<br />

α1,2 ; α1,3 ; α1,4 ; α1,6 ;<br />

β1,4

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