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6 METHODEN<br />

6.1 Prokaryotische Zellkultur<br />

METHODEN<br />

6.1.1 Kultivierung und Kryokonservierung von Escherichia coli<br />

Der verwendete E. coli Stamm XL1-Blue wurde in LB-Medium angezogen oder auf<br />

LB-Agarplatten kultiviert. Die Inkubation erfolgte bei 37°C über Nacht.<br />

Suspensionskulturen wurden bei 200 rpm geschüttelt. Für eine Kryokonservierung<br />

wurden 500 µl Kultur mit 30 % Glycerin versetzt, in flüssigem Stickstoff<br />

schockgefroren und bei -70°C gelagert.<br />

LB-Medium: 10 g Bacto Trypton, 5 g Bacto Hefeextrakt, 5 g NaCl,<br />

ad 1 l H2O; pH 7,5<br />

LB-Agar: LB-Medium mit 1,5% Agar<br />

Selektionsmedien: 100 µg/ml Ampicillin, 25 µg/ml Kanamycin,<br />

12 µg/ml Tetracyclin, 25 µg/ml Zeocin<br />

6.1.2 Herstellung Transformations-kompetenter E.coli<br />

Zur Herstellung transformationskompetenter E.coli wurde LB-Medium mit einer<br />

E.coli Übernachtkultur 1:100 angeimpft und bei 37°C bis zu einer OD600 von etwa 0,4<br />

geschüttelt. Nach Abkühlen auf Eis wurden die Bakterien pelletiert (4000 rpm, 5 min,<br />

4°C), in 0,5 Volumen eiskalter 50 mM CaCl2-Lösung aufgenommen und 30 min auf<br />

Eis inkubiert. Nach erneuter Zentrifugation (4000 rpm, 30 s, 4°C) wurde das<br />

Bakterienpellet in 0,05 Volumen eiskalter 50 mM CaCl2-Lösung vorsichtig<br />

resuspendiert. Die kompetenten Bakterien wurden daraufhin entweder direkt zur<br />

Transformation eingesetzt oder nach Zugabe von 20 % Glycerin zu je 200 µl<br />

aliquotiert, in flüssigem Stickstoff schockgefroren und bei -70°C bis zur Verwendung<br />

gelagert.<br />

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