PDF 5.972kB - TOBIAS-lib - Universität Tübingen
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METHODEN<br />
Reaktions“kugeln“ enthalten alle benötigten Reaktionssubstanzen mit Ausnahme der<br />
jeweils eingesetzten DNA-Matrize sowie dem entsprechenden Primerpaar. Nach<br />
Zugabe dieser fehlenden Komponenten wurde der Reaktionsansatz mit H2O auf 25 µl<br />
aufgefüllt und die lyophylisierten „PCR-Kugeln“ darin gelöst.<br />
• Reaktionsansatz für die Analyse isolierter Gene :<br />
0,4 µl Plasmid DNA<br />
+ je 25 pmol seq/rev Primer<br />
PCR-Zyklus Denaturieren 1: 1 min, 94°C<br />
Denaturieren 2: 30 s, 70°C<br />
Annealing: 1 min, 60°-64 o C<br />
Elongation: 1 min, 72°C<br />
Nach jeweils 30 Zyklen wurden die Reaktionen durch Kühlen auf 4°C abgebrochen. Je<br />
1/10 der PCR-Ansätze wurde anschließend gelelektrophoretisch analysiert.<br />
6.4.10 Präparation von Plasmid-DNA<br />
6.4.10.1 Analytische Isolierung von Plasmid-DNA<br />
„Schnellminipräparation“ bakterieller Plasmid-DNA [LE GOUILL, 1991]<br />
Für eine schnelle Überprüfung von transformierten Bakterienklonen auf das<br />
Vorhandensein rekombinanter Plasmide kann mittels dieser Schnellmethode Plasmid-<br />
DNA direkt aus Bakterienkolonien, die auf einer Agarplatte angezogen wurden,<br />
isoliert werden. Die Bakterienklone werden hierbei mit einer Pipettenspitze direkt von<br />
der Agarplatte gepickt und in einem Eppendorfgefäß in 16 µl Lysepuffer<br />
resuspendiert. Nach Zugabe von 3 µl Lösung 2 wird für 4 min bei 14000 rpm<br />
zentrifugiert und der gesamte nukleinsäurehaltige Überstand in einem Agarosegel<br />
aufgetrennt.<br />
Lysepuffer: 9 Vol. 10x Auftragspuffer, 11 Vol. H2O,<br />
40 Vol. 0,2 N NaOH/1%SDS<br />
10x Auftragspuffer: 0,25% Xylencyanol, 0,25% Bromphenolblau,<br />
25% Ficoll 400<br />
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