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Ce document numérisé est le fruit d'un long travail approuvé par le ...

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MATERIELS ET METHODES<br />

1. MODELES BIOLOGIQUES<br />

a. Lignées cellulaires<br />

<strong>le</strong>s cellu<strong>le</strong>s Caco-2 [93] sont cultivées dans du milieu minimum essentiel modifié <strong>par</strong><br />

Dulbecco (DMEM ; Eurobio, <strong>le</strong>s Ulis, France) contenant 20 % (v/v), de sérum de veau foetal<br />

(Life Technologies, Pays<strong>le</strong>y, Ecosse) décomplémenté <strong>par</strong> chauffage à 56°C pendant 30 min et<br />

1 % (v/v) d'acides aminés non essentiels (Eurobio). <strong>le</strong>s cellu<strong>le</strong>s HT29 [93] sont cultivées dans<br />

du milieu DMEM contenant 10 % (v/v) de sérum de veau foetal (Eurobio) décomplémenté et 2<br />

mM de l-glutamine (Eurobio). <strong>le</strong>s flacons de culture sont placés dans un incubateur (Heraeus,<br />

Mannheim, Al<strong>le</strong>magne) à 37°C sous une atmosphère humide contenant 5 % de CO 2<br />

. <strong>le</strong> milieu<br />

de culture <strong>est</strong> changé tous <strong>le</strong>s jours.<br />

<strong>le</strong>s cellu<strong>le</strong>s Caco-2 et HT29 sont repiquées (cette opération <strong>est</strong> appelée Passage et<br />

<strong>est</strong> notée Pi), respectivement à 5 et 7 jours de culture. <strong>le</strong> tapis cellulaire <strong>est</strong> lavé avec du<br />

tampon phosphate de sodium/potassium modifié <strong>par</strong> Dulbecco (DPBS : 8 mM Na2HP04, 7<br />

H20, 1,5 mM KH2P04 (pH :7,4) contenant 1,37 mM NaCI et 2,7 mM KCI) puis dissocié <strong>par</strong> un<br />

mélange de trypsine à 2 % (p/v) et d'EDTA à 0,54 mM (Eurobio) préalab<strong>le</strong>ment chauffé à<br />

37°C. Après 5 min d'incubation, la suspension cellulaire obtenue <strong>est</strong> mélangée à 5 ml de<br />

milieu de culture puis el<strong>le</strong> <strong>est</strong> centrifugée à 1000 g pendant 5 min. <strong>le</strong> culot de cellu<strong>le</strong>s obtenu<br />

<strong>est</strong> fina<strong>le</strong>ment suspendu dans du DPBS. <strong>le</strong> nombre des cellu<strong>le</strong>s <strong>est</strong> apprécié à l'aide <strong>d'un</strong><br />

hématimètre Neubauer après dilution au demi dans une solution de b<strong>le</strong>u trypan à 0,04 % (v/v).<br />

<strong>le</strong>s cellu<strong>le</strong>s Caco-2 et HT29 sont ensemencées à raison de 6.10 4 cellu<strong>le</strong>s/ml et 5.10 5<br />

cellu<strong>le</strong>s/ml de milieu de culture, respectivement. <strong>le</strong>s cellu<strong>le</strong>s sont placées à 37°C sous une<br />

atmosphère humide contenant 5 % de C02. Il <strong>est</strong> important de préciser qu'au cours de cette<br />

étude, nous avons utilisé des cellu<strong>le</strong>s Caco-2 correspondant à des passages compris entre<br />

P106 et P120. En effet, lors des repiquages successifs, l'expression des marqueurs de<br />

différenciation de ces cellu<strong>le</strong>s comme la saccharase/isomaltase peut diminuer ou dis<strong>par</strong>aître<br />

[388]. Concernant <strong>le</strong>s cellu<strong>le</strong>s HT29, nous avons utilisé <strong>le</strong>s passages compris entre P190 et<br />

P205.<br />

<strong>le</strong>s cellu<strong>le</strong>s sont recueillies après 5, 10 et 15 jours de culture. <strong>le</strong> tapis de cellu<strong>le</strong>s <strong>est</strong><br />

lavé trois fois avec du DPBS froid puis <strong>est</strong> stocké à -80°C jusqu'à utilisation.<br />

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