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Ce document numérisé est le fruit d'un long travail approuvé par le ...

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puis retourné à l'aide <strong>d'un</strong>e fine baguette de verre de 2 mm de diamètre. Une extrémité de<br />

l'int<strong>est</strong>in <strong>est</strong> ligaturée tandis que l'autre <strong>est</strong> laissée libre afin de pouvoir remplir doucement<br />

l'int<strong>est</strong>in de tampon DPBS à l'aide <strong>d'un</strong>e seringue sans aiguil<strong>le</strong>. L'int<strong>est</strong>in ainsi gonflé <strong>est</strong><br />

déposé dans un er<strong>le</strong>nMeyer rempli de 100 mL <strong>d'un</strong>e solution contenant 0,15 M NaCI et 1 mM<br />

d'EDTA (pH :S,O). L'ensemb<strong>le</strong> mis sur de la glace pendant 10 min <strong>est</strong> agité régulièrement. Les<br />

entérocytes sont mis en suspension sous l'action de l'EDTA.<br />

L'enrichissement et la qualité de chaque fraction cellulaire sont apprec<strong>le</strong>s sous<br />

microscope à phase inversée. Les premières fractions sont riches en entérocytes provenant<br />

du haut des villosités (fractions notées F1). Les fractions suivantes (F2 à F4) sont constituées<br />

de cellu<strong>le</strong>s de la <strong>par</strong>tie médiane, puis de la base des villosités. Les dernières fractions (F5 et<br />

F6) contiennent <strong>le</strong>s cellu<strong>le</strong>s des cryptes. Chaque fraction <strong>est</strong> centrifugée pendant 5 min à 3000<br />

g. Les culots cellulaires reçoivent 2 mL <strong>d'un</strong>e solution d'extraction des ARN puis sont placés à<br />

-SO°C.<br />

Il.TECHNIQUES BIOCHIMIQUES<br />

a. Dosage des protéines<br />

Extraction protéique<br />

Les protéines sont extraites à <strong>par</strong>tir des cellu<strong>le</strong>s Caco-2, des cellu<strong>le</strong>s HT29, des<br />

tissus humains et murins selon <strong>le</strong> protoco<strong>le</strong> décrit <strong>par</strong> Mansen et al. [210].<br />

100 mg de tissus sont homogénéisés au Potter dans 500 ~L de la solution d'extraction<br />

protéique contenant 25 mM Hepes/KOH (pH :7,5), 0,4 M KCI, 1 mM EDTA, 2 mM DTT et un<br />

mélange d'anti-protéases (comp<strong>le</strong>xe BM , Roche, Mannheim, Al<strong>le</strong>magne). Les cellu<strong>le</strong>s Caco-2<br />

ou <strong>le</strong>s cellu<strong>le</strong>s HT29 sont récupérées à l'aide <strong>d'un</strong> rateau et sont rassemblées dans 500 ~L de<br />

la solution d'extraction. L'ensemb<strong>le</strong> <strong>est</strong> vortexé puis laissé à 4°C pendant 15 min. Après<br />

centrifugation à 15000 g pendant 20 min à 4°C, seul <strong>le</strong> surnageant <strong>est</strong> conservé.<br />

Oosage protéique<br />

Les protéines tota<strong>le</strong>s sont dosées <strong>par</strong> la technique de Bradford [24] grâce à une<br />

trousse commercia<strong>le</strong> (Bio Rad, Hercu<strong>le</strong>s, CA, USA). Nous avons utilisé l'albumine bovine<br />

sérique (B8A) comme protéine de référence.<br />

Les protéines sont conservées à -SO°C sous forme d'aliquotes de 50 ~g, 25 ~g ou 10 ~g de<br />

protéines.<br />

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