Alberto Risueño Pérez - Gredos - Universidad de Salamanca
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Tesis Doctoral<br />
subtipo fueron: 0.971 para controles sanos CD19+; 0.954 para CLL-‐nk; 0.950 para CLL 13q-‐L y<br />
0.930 para CLL 13q-‐H. Esto indica que las muestras sanas son más homogéneas que las<br />
muestras CLL <strong>de</strong> mejor pronóstico, que a su vez son más parecidas entre sí que las muestras <strong>de</strong><br />
CLL <strong>de</strong> peor pronóstico. Esto confirma la i<strong>de</strong>a <strong>de</strong> que las muestras <strong>de</strong> CLL 13q-‐H presentarían<br />
una mayor variabilidad interna. Debido a que los algoritmos <strong>de</strong> expresión diferencial buscan<br />
estabilidad <strong>de</strong>ntro <strong>de</strong> cada categoría y diferencias inter-‐categorías, pue<strong>de</strong> inferirse que el<br />
hecho <strong>de</strong> encontrar un menor número <strong>de</strong> genes en CLL 13q-‐H cuando se compara con el<br />
control refleja, en este caso, una menor estabilidad interna en los perfiles transcriptómicos <strong>de</strong><br />
los pacientes con CLL 13q-‐H.<br />
Finalmente, respecto a los genes específicos i<strong>de</strong>ntificados para las categorías CLL 13q-‐H y CLL<br />
13q-‐L, aunque la firma génica global es muy gran<strong>de</strong>, se pue<strong>de</strong>n asociar principalmente con<br />
procesos <strong>de</strong> proliferación celular, apoptosis y señalización celular. Se pue<strong>de</strong>n citar SYK, BLNK y<br />
PRKCB1 que han sido validados por PCR semicuantitativa y se relacionaron funcionalmente a<br />
señalización celular vía receptor <strong>de</strong> célula B. También se observó un <strong>de</strong>sequilibrio entre<br />
proliferación y apoptosis, en don<strong>de</strong> se i<strong>de</strong>ntificaron sobre-‐expresados genes anti-‐apoptóticos<br />
como BCL2 y reprimidos genes pro-‐apoptóticos como RASSF5, BAD, CASP8, CASP10, FAS.<br />
A<strong>de</strong>más <strong>de</strong> esto, genes relacionados con la proliferación celular como LEF1, E2F5 y RRAS2<br />
pudieron ser también validados experimentalmente (Rodriguez et al., 2012).<br />
2.3.2. Análisis <strong>de</strong> muestras <strong>de</strong> Mieloma Múltiple<br />
Como se ha indicado en la tabla 2.2 la serie <strong>de</strong> muestras <strong>de</strong> MM incluye 6 subtipos <strong>de</strong> la<br />
enfermedad. Sobre estos datos –eliminando previamente la categoría que presenta la doble<br />
<strong>de</strong>leción <strong>de</strong> RB y <strong>de</strong> TP53, por ser una única muestra– se aplicó el algoritmo Global Test, para<br />
comprobar en qué medida la firma <strong>de</strong> expresión basada en miRNAs, e i<strong>de</strong>ntificada por<br />
métodos <strong>de</strong> expresión diferencial, marca bien cada una <strong>de</strong> las 59 muestras <strong>de</strong> pacientes <strong>de</strong><br />
MM analizados.<br />
Según lo indicado anteriormente, para realizar el Global Test como factores <strong>de</strong> entrada a priori<br />
se utilizaron los datos <strong>de</strong> expresión <strong>de</strong> los miRNAs i<strong>de</strong>ntificados como <strong>de</strong>sregulados que,<br />
<strong>de</strong>spués <strong>de</strong> eliminar los repetidos, sumaron 49. El resultado <strong>de</strong> dicho test <strong>de</strong>volvió un p-‐valor<br />
inferior a 0,001, <strong>de</strong>mostrando una fuerte relación entre expresión y categorías citogenéticas<br />
<strong>de</strong> MM. La figura 2.4 indica cómo las diferentes muestras <strong>de</strong> cada categoría <strong>de</strong> MM se<br />
i<strong>de</strong>ntifican con el perfil <strong>de</strong> expresión <strong>de</strong> los miRNAs. Dicha figura fue realizada con la función<br />
llamada sampleplot, que representa la influencia <strong>de</strong> la expresión <strong>de</strong> los miRNAs seleccionados<br />
respecto a cada una <strong>de</strong> las muestras. Cada barra representa por tanto un paciente y su sentido<br />
arriba o abajo, indica evi<strong>de</strong>ncia en contra o a favor <strong>de</strong> la hipótesis nula, es <strong>de</strong>cir, <strong>de</strong> po<strong>de</strong>r<br />
categorizar o no cada muestra individual <strong>de</strong>ntro <strong>de</strong> su grupo. Si la barra tiene valor positivo<br />
(hacia arriba), su perfil <strong>de</strong> expresión es similar a las otras muestras <strong>de</strong> su categoría y<br />
relativamente distinto al resto <strong>de</strong> categorías. Si la barra es negativa (hacia abajo), la muestra<br />
tiene un perfil <strong>de</strong> expresión poco parecido a las <strong>de</strong> su categoría. En caso <strong>de</strong> cumplirse la<br />
hipótesis nula, la influencia esperada sería 0. Las marcas <strong>de</strong> las barras indican la <strong>de</strong>sviación<br />
estándar <strong>de</strong> la influencia <strong>de</strong> la muestra bajo la hipótesis nula. El subtipo <strong>de</strong> MM que mostró<br />
mayor influencia fue la clase t(14;16), siendo por lo tanto el que mejor se i<strong>de</strong>ntifica con el<br />
perfil <strong>de</strong> expresión <strong>de</strong> los 49 miRNAS seleccionados. El subtipo <strong>de</strong> MM que mostró la menor<br />
influencia resultó ser el grupo <strong>de</strong> FISH normal.<br />
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