Alberto Risueño Pérez - Gredos - Universidad de Salamanca
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Tesis Doctoral<br />
permitiría, sin duda, estudiar <strong>de</strong> modo más directo y específico las distintas isoformas<br />
proteicas que <strong>de</strong> dicho locus pue<strong>de</strong>n surgir en distintos tipos celulares o en distintos estados<br />
funcionales.<br />
3.1.2 Técnicas <strong>de</strong> <strong>de</strong>tección <strong>de</strong> splicing alternativo<br />
La <strong>de</strong>tección <strong>de</strong> eventos <strong>de</strong> splicing se pue<strong>de</strong> realizar mediante técnicas <strong>de</strong> biología molecular<br />
como es la PCR en tiempo real (RT-‐PCR). También la información acumulada en bases <strong>de</strong> datos<br />
biológicas como en librerías <strong>de</strong> EST u otras como ASD (Thanaraj et al., 2004) o ASTD (Koscielny<br />
et al., 2009), pue<strong>de</strong>n proporcionar pistas sobre la transcripción <strong>de</strong> isoformas en distintos tipos<br />
<strong>de</strong> tejidos sanos y también en tejidos enfermos o estados patológicos. Sin embargo, para<br />
obtener una visión global a nivel genómico/transcriptómico en un solo análisis, se precisa el<br />
uso <strong>de</strong> técnicas <strong>de</strong> alto rendimiento <strong>de</strong> gran escala (técnicas "ómicas").<br />
Como se ha explicado en el capítulo 1, los microarrays basados en tecnología <strong>de</strong> amplificación<br />
3’ IVT, solo incluyen sondas en regiones cercanas al 3’ <strong>de</strong>l locus. No en todos los loci estas<br />
sondas se sitúan en el último exón, pudiendo encontrarse también en exones anteriores o<br />
incluso entre dos exones (sondas inter-‐exónicas). Algunos autores han aprovechado estos<br />
hechos para inferir eventos <strong>de</strong> splicing alternativo en <strong>de</strong>terminados genes (Stalteri and<br />
Harrison, 2007) o incluso diseñar alguna herramienta <strong>de</strong> predicción (Rambaldi et al., 2007).<br />
Sin embargo, estos microarrays no tienen una buena cobertura <strong>de</strong> todos los exones <strong>de</strong> los<br />
genes que mapean. Existen por otro lado microarrays diseñados para el estudio <strong>de</strong>l splicing<br />
alternativo que ubican sus sondas entre exones, llamados "exon junction microarrays" (EJM).<br />
Este tipo <strong>de</strong> tecnología ha sido quizás la más utilizada para estudios <strong>de</strong> splicing antes <strong>de</strong> la<br />
llegada <strong>de</strong> los microarrays específicos <strong>de</strong> exones y <strong>de</strong> la secuenciación masiva, y ha dado<br />
buenos resultados según reportan algunas publicaciones (Anton et al., 2008; Johnson et al.,<br />
2003). Incluso más recientemente se han seguido diseñando y comercializando nuevos<br />
mo<strong>de</strong>los <strong>de</strong> este tipo <strong>de</strong> microarrays, así como haciendo esfuerzos por plantear estrategias<br />
para su análisis, como es el caso <strong>de</strong> los métodos computacionales GenASAP (Shai et al., 2006)<br />
o MADS+ (Shen et al., 2010). Con la llegada <strong>de</strong> la técnica random priming para la copia y<br />
amplificación <strong>de</strong> material genético, se hizo posible situar sondas a lo largo <strong>de</strong> un locus génico<br />
<strong>de</strong> modo uniforme sin sufrir la pérdida <strong>de</strong> señal que provocaba la lejanía al 3’ con las técnicas<br />
clásicas. De esta manera se pudieron diseñar mo<strong>de</strong>los <strong>de</strong> microarrays como el Human Exon 1.0<br />
<strong>de</strong> Affymetrix. Este microarray permite medir no solo la expresión <strong>de</strong>l gen, sino también la<br />
expresión <strong>de</strong> cada uno <strong>de</strong> sus exones (ver capítulo 1). Esta forma <strong>de</strong> po<strong>de</strong>r medir la expresión<br />
a dos niveles (exón y locus completo) constituye la base <strong>de</strong> todos los algoritmos <strong>de</strong> medida <strong>de</strong><br />
splicing que se <strong>de</strong>tallan en la sección "Materiales y métodos". Este sistema ofrece a<strong>de</strong>más la<br />
ventaja <strong>de</strong> no <strong>de</strong>pen<strong>de</strong>r <strong>de</strong>l conocimiento que se tenga <strong>de</strong> los distintos exones que componen<br />
el genoma en el momento <strong>de</strong>l diseño <strong>de</strong>l microarray, como ocurre en el caso <strong>de</strong> los EJA (Clark<br />
et al., 2007). El diseño <strong>de</strong> sondas para todos los exones permite reagrupar las sondas en<br />
transcritos alternativos que pue<strong>de</strong>n cambiar conforme avanza el conocimiento <strong>de</strong> un locus,<br />
permitiendo así <strong>de</strong>scubrir isoformas no anotadas en el momento <strong>de</strong>l diseño <strong>de</strong>l microarray. La<br />
secuenciación masiva <strong>de</strong> RNA (RNA-‐seq) es capaz <strong>de</strong> i<strong>de</strong>ntificar y cuantificar las secuencias <strong>de</strong><br />
regiones genómicas expresadas en una <strong>de</strong>terminada muestra, a partir <strong>de</strong> su mRNA total,<br />
in<strong>de</strong>pendientemente <strong>de</strong> que dichas regiones estén <strong>de</strong>finidas como un exón (Mortazavi et al.,<br />
2008; Wang et al., 2009). El posterior alineamiento <strong>de</strong> estas secuencias sobre el genoma,<br />
revela todos los exones que son transcritos para cada gen, lo cual permite la i<strong>de</strong>ntificación <strong>de</strong><br />
eventos <strong>de</strong> splicing mediante la comparación entre muestras.<br />
El trabajo previo con GATExplorer, presentado en el capítulo 1, proporcionó un mapeo <strong>de</strong> las<br />
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