Contribution à l'étude de virus de mollusques marins apparentés ...
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2 - Essais d'infection <strong>de</strong> primocultures <strong>de</strong> cellules d'huître creuse, Crassostrea<br />
gigas<br />
2.1 - Mise au point d'un protocole <strong>de</strong> primocuIture <strong>de</strong> cellules cardiaques d'huître<br />
creuse, Crassostrea gigas<br />
La reproduction <strong>de</strong> l'herpès<strong>virus</strong> ne donnant pas <strong>de</strong> résultats immédiats et simples<br />
d'interprétation et nécessitant <strong>de</strong> faire appel pour confirmation aux techniques histologiques et<br />
<strong>à</strong> la microscopie électronique, il est apparu intéressant <strong>de</strong> visualiser les éventuels effets<br />
cytopathogènes, dus <strong>à</strong> ce <strong>virus</strong> sur <strong>de</strong>s cellules d'huître en culture. En effet, le choix d'un<br />
système homologue, plutôt que d'un système hétérologue semblerait plus adapté aux<br />
recherches menées.<br />
Or, il n'existe pas <strong>de</strong> lignée cellulaire d'huître disponible actuellement. Le travail<br />
entrepris <strong>à</strong> donc consisté <strong>à</strong> tenter d'adapter une technique permettant d'obtenir <strong>de</strong>s<br />
primocultures <strong>de</strong> cellules fibroblastiques d'huître (Cousserans et al., 1974). En effet les<br />
particules virales (herpès<strong>virus</strong>-like) sont observées chez les larves d'huîtres creuses dans les<br />
cellules fibroblastiques du vélum et l'ensemble <strong>de</strong>s caractères observés <strong>de</strong> ce <strong>virus</strong> le font<br />
rapprocher <strong>de</strong>s Betaherpes<strong>virus</strong> qui ont un fort tropisme vis <strong>à</strong> vis <strong>de</strong>s cellules <strong>de</strong> type<br />
fibroblastique.<br />
Plusieurs facteurs sont liés <strong>à</strong> l'obtention <strong>de</strong> primocultures : le choix <strong>de</strong>s tissus, le mo<strong>de</strong><br />
<strong>de</strong> dissociation mécanique et la protéase utilisée, le milieu <strong>de</strong> culture et les facteurs <strong>de</strong><br />
croissance présents dans le milieu, les facteurs favorisant l'ancrage <strong>de</strong>s cellules (Alberts et al.,<br />
1983 ; Watson et al., 1987 ; Gumbiner et al., 1993).<br />
Différents tissus riches en fibroblastes ont été testés : la membrane péricardique, le<br />
manteau et le coeur. Différents facteurs ont été testés afin d'obtenir une dissociation <strong>de</strong>s tissus<br />
et <strong>de</strong>s cellules maximale. Ils correspon<strong>de</strong>nt <strong>à</strong> l'utilisation <strong>de</strong> protéases (trypsine et collagénase)<br />
<strong>à</strong> différentes concentrations et <strong>à</strong> <strong>de</strong>s techniques <strong>de</strong> dissociation mécaniques utilisant un<br />
broyeur <strong>de</strong> type Dounce ou une pipette automatique <strong>de</strong> 500 Ill. La technique retenue après <strong>de</strong><br />
nombreux essais permet d'obtenir une bonne dissociation <strong>de</strong>s tissus et une assez bonne<br />
conservation <strong>de</strong>s cellules. Cette métho<strong>de</strong> est détaillée dans l'article joint.<br />
Une fois ce protocole <strong>de</strong> dissociation établi, il a été nécessaire <strong>de</strong> définir quel était le<br />
tissu le plus intéressant pour l'obtention <strong>de</strong> fibroblastes. La membrane péricardique est un<br />
tissu d'assez petite taille et ne contenant que peu <strong>de</strong> cellules. Quant aux essais effectués sur le<br />
manteau, ils donnent un assez grand nombre <strong>de</strong> cellules, mais posent un problème <strong>de</strong><br />
dissociation, car la technique mise au point précé<strong>de</strong>mment ne suffit pas <strong>à</strong> dissocier totalement<br />
les cellules, et une dissociation plus poussée ne permet pas d'obtenir <strong>de</strong>s cellules en assez bon<br />
état pour être mises en culture. Par contre, les essais <strong>de</strong> dissociation effectués sur du ventricule<br />
cardiaque d'huître, donnent <strong>de</strong> bons résultats.<br />
Les travaux ultérieurs <strong>de</strong> mise au point d'un milieu <strong>de</strong> culture ont donc été réalisés <strong>à</strong><br />
partir <strong>de</strong> cet organe. Les cellules dissociées <strong>de</strong> ventricule cardiaque ont été mises en culture<br />
dans <strong>de</strong>s milieux synthétiques (milieu <strong>de</strong> Leibovitz : L-15 et 199), préparés trois fois<br />
concentrés (3X) afin d'obtenir une osmolarité compatible avec celles <strong>de</strong>s cellules d'huître, ou<br />
bien dans <strong>de</strong> l'eau <strong>de</strong> mer.<br />
La croissance cellulaire en milieu 199 est limitée et la survie <strong>de</strong>s cellules n'est que <strong>de</strong><br />
quelques jours (cinq <strong>à</strong> huit jours). Les <strong>de</strong>ux premiers jours les cellules se fixent et s'étalent,<br />
mais ensuite, elles meurent assez rapi<strong>de</strong>ment. Par contre, en milieu <strong>de</strong> Leibovitz (LI5), les<br />
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