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Contribution à l'étude de virus de mollusques marins apparentés ...

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Du fait <strong>de</strong> la présence d'une coquille, la dissociation <strong>de</strong>s tissus larvaires est moins aisé.<br />

Différents essais ont été réalisés afin <strong>de</strong> faciliter le broyage préalable <strong>de</strong> la coquille <strong>de</strong>s larves.<br />

Le broyage direct <strong>de</strong>s échantillons <strong>à</strong> l'Ultra-Turrax et/ou <strong>à</strong> l'ai<strong>de</strong> d'un tube <strong>de</strong> Potter ne<br />

donne pas un résultat satisfaisant.<br />

Une décalcification préalable <strong>de</strong>s échantillons par l'EDT A disodique <strong>à</strong> 5% pendant<br />

<strong>de</strong>ux <strong>à</strong> quatre heures, s'est avéré efficace pour réaliser un broyage <strong>de</strong>s larves en alternant<br />

l'utilisation <strong>de</strong> l'Ultra-Turrax et d'un tube <strong>de</strong> Potter. Les étapes ultérieures <strong>de</strong> purification n'ont<br />

cependant permis d'obtenir qu'une suspension enrichie en particules virales incomplètes<br />

(capsi<strong>de</strong>s vi<strong>de</strong>s).<br />

Seuls <strong>de</strong>s échantillons faiblement vi rosés étaient disponibles lors <strong>de</strong> ces essais, ce qui<br />

peut expliquer en partie ces résultats. Toutefois, le protocole <strong>de</strong> décalcification <strong>de</strong>s larves par<br />

l'EDT A n'a pas été retenu car il est possible que ce traitement altère les particules virales. En<br />

effet, l'EDTA est un agent chélateur <strong>de</strong>s ions divalents, et en modifiant la composition du<br />

milieu, peut être responsable <strong>de</strong> la dissociation même partielle <strong>de</strong>s capsi<strong>de</strong>s et nucléocapsi<strong>de</strong>s<br />

virales.<br />

Des essais ont été réalisés ultérieurement sans décalcification préalable par l'EDT A,<br />

mais en utilisant du sable <strong>de</strong> Fontainebleau (R.P. Hedrick et S. Chilmonczik, communication<br />

personnelle). Ce sable, très fin, permet un broyage efficace <strong>de</strong>s tissus larvaires car les<br />

coquilles sont elles mêmes finement broyées.<br />

Les proportions retenues après plusieurs essais sont: <strong>de</strong>ux grarnrnes <strong>de</strong> sable <strong>de</strong><br />

Fontainebleau par grarnrne <strong>de</strong> larves, additionnés <strong>de</strong> 15 ml <strong>de</strong> tampon (volume final<br />

minimum). Les larves vi rosées (IX g) sont broyées une première fois <strong>à</strong> l'Ultra-Turrax en<br />

présence <strong>de</strong> 2X g <strong>de</strong> sable et 5X ml <strong>de</strong> tampon, puis ce broyat grossier est dilué par addition<br />

<strong>de</strong> 10X ml <strong>de</strong> tampon et broyé une secon<strong>de</strong> fois <strong>à</strong> l'Ultra-Turrax.<br />

4 - Filtration et clarification <strong>de</strong>s broyats<br />

Les gros débris et éventuellement les résidus <strong>de</strong> coquille et <strong>de</strong> sable présents dans les<br />

broyats sont éliminés par <strong>de</strong>s étapes successives <strong>de</strong> filtration (Hervio, 1992) et <strong>de</strong> clarification<br />

par centrifugation <strong>à</strong> basse vitesse.<br />

Après plusieurs essais, le protocole retenu est la filtration <strong>de</strong>s broyats successivement<br />

sur <strong>de</strong>s tamis <strong>de</strong> 250 J.Im et 60 J.Im. Le broyat filtré est ensuite clarifié par trois centrifugations<br />

<strong>de</strong> 30 minutes <strong>à</strong> <strong>de</strong>s vitesses croissantes (250 g, 1000 g et 4000 g) <strong>de</strong> façon <strong>à</strong> éliminer<br />

progressivement les gros débris.<br />

5 - Fractionnement <strong>de</strong>s broyats<br />

Les broyats filtrés et clarifiés sont concentrés par ultracentrifugation <strong>à</strong> 200 000 g<br />

pendant une heure. Le culot obtenu, contenant les particules virales et différents constituants<br />

cellulaires, est remis en suspension dans un volume <strong>de</strong> 5 ml <strong>de</strong> tampon pour 1 <strong>à</strong> 2 g <strong>de</strong> larves<br />

ou <strong>de</strong> tissus initiaux. La dissociation totale du culot est facilitée par une agitation <strong>à</strong> froid (30<br />

minutes <strong>à</strong> une heure) <strong>à</strong> l'ai<strong>de</strong> d'un agitateur magnétique.<br />

Différents essais ont conduit <strong>à</strong> choisir un fractionnement <strong>de</strong> la suspension obtenue ci<strong>de</strong>ssous<br />

sur un gradient <strong>de</strong> saccharose discontinu (Hayashi el al. , 1986 ; Hayashi el al., 1988 ;<br />

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