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Contribution à l'étude de virus de mollusques marins apparentés ...

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Annexe 2 : Métho<strong>de</strong>s et techniques<br />

Certaines métho<strong>de</strong>s, notamment l'infection expérimentale <strong>de</strong> larves axéniques par le<br />

<strong>virus</strong> <strong>de</strong> type herpès, la technique <strong>de</strong> primoculture <strong>de</strong> cellules cardiaques d'huître creuse et<br />

plate et la purification du <strong>virus</strong> <strong>de</strong> type herpès figurent dans ce mémoire sous forme <strong>de</strong><br />

publications ou <strong>de</strong> résultats dans les chapitres correspondants.<br />

1 - Métho<strong>de</strong>s histologiques<br />

L'histologie est une technique visant <strong>à</strong> l'observation <strong>de</strong>s structures cellulaires et<br />

tissulaires en microscopie photonique. La préparation <strong>de</strong>s tissus comporte différentes étapes:<br />

1.1 - Fixation <strong>de</strong>s tissus<br />

- Fixation <strong>de</strong>s tissus<br />

- Déshydratation, imprégnation et inclusion <strong>de</strong>s échantillons<br />

- Confection <strong>de</strong>s coupes<br />

- Coloration et montage <strong>de</strong>s lames<br />

Le fixateur a pour rôle <strong>de</strong> maintenir les tissus dans un état aussi proche que possible <strong>de</strong><br />

leur morphologie in vivo et <strong>de</strong> conserver les tissus pour qu'il ne se dégra<strong>de</strong>nt pas avec le<br />

temps. Les principaux fixateurs utilisés pour <strong>l'étu<strong>de</strong></strong> <strong>de</strong>s <strong>mollusques</strong> <strong>marins</strong> sont le Davidson<br />

et le Carson, ils sont respectivement <strong>de</strong>s solutions <strong>de</strong> formol salée et tamponnée. Le liqui<strong>de</strong> <strong>de</strong><br />

Bouin peut également être utilisé pour <strong>de</strong>s applications particulières.<br />

Composition du liqui<strong>de</strong> <strong>de</strong> Davidson:<br />

Eau <strong>de</strong> mer<br />

Alcool <strong>à</strong> 95°<br />

Formaldéhy<strong>de</strong> <strong>à</strong> 38%<br />

Glycérol<br />

Aci<strong>de</strong> acétique cristallisable<br />

1200 ml<br />

1200 ml<br />

300 ml<br />

400 ml<br />

10% (ajouter extemporanément)<br />

Le liqui<strong>de</strong> <strong>de</strong> Davidson, du fait <strong>de</strong> sa composition <strong>à</strong> base d'eau <strong>de</strong> mer, permet <strong>de</strong> bien<br />

préserver la structure <strong>de</strong>s tissus. De plus, les coupes <strong>de</strong> tissus fixés au Davidson peuvent être<br />

colorées ultérieurement par <strong>de</strong>s métho<strong>de</strong>s histochimiques telles que la métho<strong>de</strong> <strong>de</strong> Feulgen et<br />

Rossenbeck ou la coloration <strong>à</strong> l'acridine orange.<br />

Composition du liqui<strong>de</strong> <strong>de</strong> Carson:<br />

NaHl04,2HP<br />

NaOH<br />

Eau distillée<br />

Formaldéhy<strong>de</strong> <strong>à</strong> 40%<br />

Ajuster le pH <strong>à</strong> 7,2 - 7,4<br />

Le liqui<strong>de</strong> <strong>de</strong> Carson est moins approprié<br />

d' échantillons en histologie. Toutefois, il permet<br />

205<br />

23,8 g<br />

5,2 g<br />

900 ml<br />

100 ml<br />

que le Davidson pour l' analyse<br />

une très bonne conservation <strong>de</strong>

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