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Contribution à l'étude de virus de mollusques marins apparentés ...

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2.1.2 - Extraction, caractérisation et clonage du génome viral <strong>à</strong> partir <strong>de</strong> particules<br />

virales purifiées<br />

Des échantillons <strong>de</strong> particules virales purifiées ayant pu être obtenues <strong>à</strong> la fin <strong>de</strong> ce<br />

travail <strong>de</strong> thèse (Chapitre V), l'extraction et le clonage <strong>de</strong> l'ADN viral ont été réalisés. La mise<br />

au point d'une métho<strong>de</strong> <strong>de</strong> diagnostic <strong>de</strong> l'infection virale par dot-blot a été initiée.<br />

Les aci<strong>de</strong>s nucléiques présents dans les échantillons <strong>de</strong> <strong>virus</strong> purifié ont été extraits<br />

selon un protocole classique (Annexe 2). Puis, la nature du génome viral a été déterminée par<br />

digestion par enzymes <strong>de</strong> restriction et électrophorèse en gel d'agarose (Figure 4).<br />

L'aci<strong>de</strong> nucléique non digéré est <strong>de</strong> haut poids moléculaire, une seule ban<strong>de</strong> migrant en<br />

amont du marqueur <strong>de</strong> taille <strong>de</strong> 21 kpb, peut être observée.<br />

Les profils obtenus après digestion enzymatique par EcoR l ou BgI II permettent <strong>de</strong><br />

visualiser plus <strong>de</strong> 24 ban<strong>de</strong>s <strong>de</strong> tailles différentes. Ces résultats montrent que le génome viral<br />

peut être coupé par <strong>de</strong>s enzymes <strong>de</strong> restriction et est donc un aci<strong>de</strong> nucléique <strong>de</strong> nature ADN<br />

qui, <strong>de</strong> plus, se présente sous une forme double brin.<br />

La taille du génome viral a été estimée <strong>à</strong> environ 180 kpb, d'après les profils <strong>de</strong><br />

restriction obtenus sur gel d'agarose après digestion totale par EcoR l et BgI II (Figure 5).<br />

Cette estimation est en accord avec les données disponibles pour les <strong>virus</strong> <strong>apparentés</strong> aux<br />

Herpesviridae, qui ont <strong>de</strong>s génomes dans une gamme <strong>de</strong> taille <strong>de</strong> 120 <strong>à</strong> 220 kpb. Néanmoins,<br />

la taille du génome viral nécessite d'être précisée, en particulier par une analyse en<br />

électrophorèse en champs pulsé.<br />

De plus, ces résultats confirment les observations réalisées en histochimie. En effet, il<br />

est possible <strong>de</strong> visualiser, dans le noyau et le cytoplasme <strong>de</strong>s cellules <strong>de</strong> C. gigas virosées,<br />

l'accumulation <strong>de</strong> matériel pouvant être coloré par la métho<strong>de</strong> <strong>de</strong> Feulgen et Rossenbeck<br />

(Renault el al., 1 994a). Ces inclusions pouvant alors être interprétées comme contenant <strong>de</strong><br />

l'ADN (Gabe, 1968). De plus, après coloration <strong>à</strong> l'acridine orange (Annexe 2), ces inclusions<br />

présentent une fluorescence verte, laissant suspecter la présence d'aci<strong>de</strong>s nucléiques double<br />

brin (Gabe, 1968).<br />

L'ADN extrait <strong>de</strong>s particules virales purifiées <strong>à</strong> partir <strong>de</strong> larves <strong>de</strong> C. gigas a été cloné<br />

dans le site EcoR l du plasmi<strong>de</strong> Bluescript KS- (Annexe 2). Environ 300 clones recombinants<br />

ont été obtenus. Quatre <strong>de</strong> ces clones ont été choisis arbitrairement pour réaliser <strong>de</strong>s essais<br />

d'hybridation en dot blot.<br />

Les inserts <strong>de</strong>s clones pl, p14, p23 et p35, <strong>de</strong> taille approximative, respectivement:<br />

2500, 2200, 3500 et 1000 pb, ont été purifiés <strong>à</strong> partir <strong>de</strong> maxipréparations <strong>de</strong> plasmi<strong>de</strong>s<br />

(Annexe), puis marqués <strong>à</strong> la peroxydase (kit ECL, Amersham).<br />

Les dot blols comprenaient <strong>de</strong>s dépôts considérés comme témoins positifs (ADN<br />

extrait <strong>de</strong> particules virales purifiées, plasmi<strong>de</strong> recombinant correspondant <strong>à</strong> la son<strong>de</strong>) ou<br />

comme témoins négatifs (ADN extrait <strong>de</strong> C. gigas adultes saines). Les autres dépôts ont été<br />

réalisés <strong>à</strong> partir d'ADN extrait d'un lot <strong>de</strong> naissain virosé et <strong>de</strong> quatre lots <strong>de</strong> larves virosées.<br />

Une série <strong>de</strong> dilutions au 1/10 a été déposée pour chaque échantillon ainsi que pour les<br />

témoins, dans une gamma allant <strong>de</strong> 1 Ilg <strong>à</strong> 0,1 pg.<br />

L'hybridation <strong>à</strong> 42°C et la révélation ont été réalisées dans les conditions indiquées par<br />

le fournisseur du kit <strong>de</strong> marquage.<br />

Les résultats montrent une gran<strong>de</strong> spécificité <strong>de</strong> l'hybridation sur les contrôles positifs<br />

et les échantillons d'ADN extraits <strong>de</strong>s lots d'animaux virosés. Aucune hybridation ne peut être<br />

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