Programme scientifique paris 2010 - AFVAC

More documents

Recommendations

Info

CONGRÈS AFVAC PARIS 2010 10-11-12 DÉCEMBRE est indiqué lorsqu’une infection des voies biliaires est suspectée chez le chien et chez le chat. L’objectif est de déterminer la ou les bactéries impliquée/s et leur sensibilité aux antibiotiques pour entreprendre un traitement approprié. L’examen cytologique du prélèvement peut s’avérer intéressant, toutefois son utilité clinique n’a pas été démontrée à ce jour. Chez le chien, les cholécystites et cholangites sont rapportées avec une fréquence grandissante. Les mucocèles de la vésicule biliaire représentent une affection récemment découverte et aisément diagnostiquée au moyen de l’échographie. Nous conseillons un prélèvement de bile dans tous les cas qui doivent subir une intervention chirurgicale en raison d’une obstruction des voies biliaires ou d’une perforation, respectivement d’un risque de perforation de la vésicule. De plus, en présence de lésions de la vésicule ou des voies biliaires, une cholécystocentèse échoguidée peut être très utile pour confi rmer ou infi rmer la présence d’une infection (parfois sousjacente). Dans une étude rétrospective de 166 chiens sur lesquels des prélèvements hépatobiliaires avaient été soumis pour culture, 28 % des prélèvements biliaires et 5 % des biopsies étaient positifs Les bactéries mises en évidence étaient des aérobies gram-négatives (coliformes, Serratia, Klebsiella) et gram-positives (entérocoques, staphylocoques, streptocoque), mais aussi des anaérobies (bactéroïdes). Toutefois, les auteurs n’ont pu identifi er aucun indice permettant de prévoir un résultat positif. Une autre étude a récemment démontré que la culture de prélèvements biliaires provenant de chiens sains pouvait être sporadiquement positive. De plus, elle n’a pas permis de mettre en évidence une prévalence augmentée de cultures positives chez des chiens affectés d’hypercortisolisme iatrogène. Chez le chat, les cholangites sont fréquentes. Une culture de la bile est particulièrement indiquée lorsqu’une cholangite neutrophilique aiguë ou chronique est suspectée. Dans ces cas, l’analyse bactériologique d’une des biopsies prélevées est également recommandée. Dans une étude rétrospective de 49 chats sur lesquels des prélèvements hépatobiliaires avaient été soumis pour culture, 36 % des prélèvements biliaires et 14 % des biopsies étaient positifs. Les bactéries mises en évidence étaient similaires à celles du chien (v. ci-dessus). Une courte communication récente confi rme le fait que la culture de prélèvements biliaires est plus souvent positive que celles de biopsies hépatiques. Enfi n, des méthodes de biologie moléculaire peuvent également être mises en œuvre sur des spécimens fi xés au formol pour déceler la présence de bactéries lors d’affections du foie et des voies biliaires (PCR, hybridisation in situ). COMMENT : MARCHE À SUIVRE Dans tous les cas, il faut être prêt à échantillonner du matériel pour analyse aérobie et anaérobie. Cette dernière nécessite l’utilisation de matériel particulier qui favorise la préservation des germes anaérobies (contrôler préalablement avec le laboratoire). La méthode de prélèvement « à ciel ouvert » est la plus simple. Pour les voies biliaires, il est souvent préférable de soumettre un échantillon de tissu (p. ex. biopsie de la paroi de la vésicule biliaire) et de la bile pour analyse bactériologique. Les prélèvements de biopsies hépatiques échoguidées (ou en aveugle) sont en tout point similaires aux techniques couramment utilisées et décrites ailleurs. Un dépistage préalable d’éventuelles coagulopathies compliquant l’hépatopathie est indispensable (mesure des temps de coagulation). Les échantillons sont introduits dans un récipient stérile adapté aux exigences du laboratoire de microbiologie. Nous utilisons des tubes remplis de soluté physiologique stérile pour prévenir le dessèchement des échantillons. La cholécystocentèse échoguidée percutanée est plus complexe à réaliser et requiert une certaine expérience en échographie. Elle est effectuée chez des animaux à jeun et sous sédation en utilisant une aiguille d’un diamètre de 22G (0,7 mm) de longueur de 3,8 cm. Celle-ci est montée sur une seringue de 5-10 mL. Les 2 approches possibles sont l’approche transhépatique droite ou l’approche abdominale ventrale droite. Nous préférons l’approche transhépatique car elle permet d’éviter la fuite de bile hors de la vésicule après la ponction, et elle diminue grandement le risque de péritonite biliaire focalisée. CONCLUSION L’analyse bactériologique de bile ou de biopsies hépatiques est un test invasif. Chez les chiens et chats subissant une cœliotomie, il est fortement recommandé de réserver des échantillons pour culture. Pour obtenir des biopsies hépatiques ou de la bile par ponction percutanée, il faut disposer d’un échographe et de l’expérience nécessaire pour éviter les complications. La mise en évidence de bactéries et l’antibiogramme sont fort utiles pour guider le choix des antibiotiques et de ce fait optimiser le traitement. La sensibilité du test n’a pas été déterminée précisément, mais une culture négative ne permet pas d’exclure défi nitivement la présence d’une infection bactérienne. >< Confl its d’intérêts Néant. • 112 • Interpréter un isolement bactérien et un antibiogramme en dermatologie D. HERIPRET DMV, CES Derm Vet, Dip ECVD, Centre Hospitalier Vétérinaire Frégis – 43 avenue Aristide Briand – F-94110 ARCUEIL L’antibiogramme permet de mesurer la capacité d’un antibiotique à inhiber in vivo la croissance de la bactérie isolée. La qualité de l’interprétation clinique d’un résultat bactériologique dépend de nombreuses variables liées au clinicien et au laboratoire : (i) qualité du prélèvement, (ii) qualité de la conservation lors de l’acheminement, (iii) bonne réalisation de la culture, (iv) choix de l’inoculum (identifi cation), (v) bonne réalisation de l’ensemencement et de l’incubation (vi) choix des antibiotiques à tester (vii) qualité de la lecture, (viii) interprétation et utilisation par le clinicien. La qualité du prélèvement est primordiale à l’interprétation fi nale : pustule fermée, confrontation cytologique, biopsie. Le risque majeur est de prélever un contaminant ou un germe rarement pathogène (Staphylococcus epidermidis par exemple). Il faudra également s’assurer de l’absence de traitement antibiotique récent ou en informer le laboratoire. Les milieux de transport actuels permettent le voyage du prélèvement jusqu’au laboratoire dans de bonnes conditions. La plupart des contraintes techniques s’appliquent au laboratoire d’analyses. Pour simplifi er, il faut s’adresser à un laboratoire d’analyses vétérinaires (connaissance des germes fréquents en médecine vétérinaire, connaissance des antibiotiques utilisables, communication facile avec le biologiste) ayant l’habitude de gérer les prélèvements bactériens. L’interprétation fi nale et les conséquences thérapeutiques dépendent du praticien : il faut, comme pour tout examen complémentaire avoir un but précis au départ et connaître les limites de l’examen. Ainsi, un prélèvement sur une otite externe aura peu d’intérêt car le laboratoire donne des résultats en fonction de la CMI 50 du germe en cause (exprimée μg/mL) alors qu’on utilise un antibiotique topique (concentration en mg/ml soit mille fois supérieure à la dose testée). Lors de mise en évidence de plusieurs germes, il faudra utiliser en premier le résultat concernant un Staphylocoque pathogène (Staphylococcus pseudintermedius ou aureus). La sensibilité d’un germe pathogène à un antibiotique, ne garantit pas le résultat clinique in vivo !!! Le clinicien devra choisir l’antibiotique dont les données pharmacodynamiques et pharmacocinétiques sont les plus adaptées au germe en cause et au tissu cible. >< Confl its d’intérêts Néant. Courtes Communications Sensibilité à l’émodepside chez les chiens porteurs de la mutation du gène mdr1 C. HUGNET Clinique Vétérinaire des Lavandes - Quartier Boulagne - BP 54 - F-26160 LA BEGUDE DE MAZENC Depuis 2008, un vermifuge contenant du praziquantel et de l’émodepside (Profender ND, Bayer HealthCare) est autorisé en Europe sous la forme de comprimés à destination des chiens. L’émodepside est un représentant d’une nouvelle classe de peptides cycliques, agissant aux jonctions neuromusculaires par stimulation des récepteurs sérotoninergiques, conduisant à une paralysie et la mort des parasites. L’émodepside a été identifi é comme étant un substrat de la glycoprotéine membranaire (P-gp). Le gène de résistance MDR1 code la production de la P-gp qui appartient à la superfamille des protéines ABC (ATP Binding Cassette) responsables de l’effl ux actif de nombreuses substances hydrophobes depuis le milieu intracellulaire vers le milieu extracellulaire. Parmi ces molécules substrats de la P-gp, se trouvent les macrolides endectocides (ivermectine), agents anticancéreux (vincristine), inhibiteurs calciques, béta-bloquants, lopéramide, etc. La P-gp est retrouvée entre autres sur les cellules endothéliales des vaisseaux capillaires cérébraux, constituant ainsi un des éléments actifs de la barrière hématoméningée, protégeant ainsi le cerveau de la neurotoxicité de certaines substances hydrophobes. La mutation par délétion de 4 paires de bases du gène MDR1 est décrite chez les colleys et d’autres races (bergers australiens, bergers blancs suisses, berger shetland…). Cette mutation conduit à un codon stop, responsable de la synthèse d’une protéine P-gp incomplète sans domaine actif. La prescription de Profender ND à la dose recommandée pour 5 chiots de race Berger australien (2 mâles, 3 femelles), d’une même portée, âgés de 4 mois, a conduit à l’apparition de troubles digestifs (vomissements) et nerveux (mydriase, ataxie, trémulations musculaires et convulsions) 3 heures après l’administration chez un chiot mâle. La résolution des symptômes a été obtenue au cours de l’hospitalisation avec un traitement symptomatique et éliminatoire. Ce chiot était homozygote pour la mutation du gène MDR1. Les autres chiens de la portée étaient hétérozygotes (n = 3) ou homozygotes pour l’allèle normal (n = 1).
CONGRÈS AFVAC PARIS 2010 10-11-12 DÉCEMBRE Des observations similaires concernant 18 chiens de ces races particulières (colleys, bergers australiens, bergers blancs suisses) ont été faites. Tous les chiens testés étaient homozygotes pour l’allèle mutant. L’émodepside associé au praziquantel était prescrit aux dosages conformément à la notice du Profender ND. Les vétérinaires doivent éviter de prescrire cette molécule à la dose recommandée par l’AMM du Profender chez les chiens homozygotes pour l’allèle mutant du gène MRD1. Outre les colleys, les shetlands, les bergers australiens et les bergers blancs suisses, certains bergers allemands et border colleys peuvent être porteurs de cette mutation. >< Confl its d’intérêts Le Dr Hugnet a des relations fi nancières avec la société ANTAGENE. Programme général PNEUMOLOGIE Bien choisir les examens complémentaires lors de rhinite chronique canine P. BERGEAUD Clinique vétérinaire de la Plage, 1 promenade Pompidou, F-13008 MARSEILLE COMMENT S’EXPRIME UNE RHINITE CHRONIQUE Les affections nasales chroniques se traduisent chez le chien par des symptômes relativement univoques, d’où la nécessité d’une démarche diagnostique rigoureuse. Quelle qu’en soit l’origine, on peut observer des éternuements, du jetage, séreux ou purulent, des épistaxis, du renifl ement inverse, ou un bruit nasal inspiratoire. Ces symptômes ne permettent que rarement d’orienter le diagnostic. Une épistaxis peut être secondaire à un trouble de la coagulation, à une leishmaniose, ou à une tumeur nasale. Un jetage purulent peut être la conséquence d’un corps étranger, d’une aspergillose, d’une tumeur, d’une fi stule oronasale, etc. Il est donc indispensable de préciser l’étiologie si l’on veut traiter effi cacement la rhinite chronique. QUELLES SONT LES CAUSES POSSIBLES D’UNE RHINITE CHRONIQUE Une étude portant sur plus de 300 cas de rhinites chroniques a permis d’établir les causes principales. Les plus fréquentes sont : les tumeurs, les fi stules oronasales, les corps étrangers, les rhinites infl ammatoires chroniques. Moins fréquemment, on peut trouver l’aspergillose, les malformations, les rhinites parasitaires. Chacune de ces affections nécessite un traitement spécifi que, d’où l’importance d’un diagnostic étiologique. Un certain nombre d’examens complémentaires sont à notre disposition pour nous y aider : - bactériologie effectuée sur un écouvillon ; - sérologie (aspergillose, leishmaniose, ehrlichiose) ; - radiographie des cavités nasales ; - rhinoscopie ; - tomodensitométrie. CE QU’IL NE FAUT PAS FAIRE Lors de jetage chronique purulent, il est classique de prescrire d’abord un traitement antibiotique à large spectre, qui a pour effet d’améliorer les symptômes, voire de les faire disparaître. Mais à l’arrêt du traitement ils réapparaissent rapidement. Il est très tentant de prélever des sécrétions nasales en aveugle sur un écouvillon, et de demander une bactériologie et un antibiogramme. Le laboratoire trouve toujours une bactérie quelque peu résistante, et l’on prescrit à nouveau un antibiotique de dernière génération, pendant une durée plus longue. Dès l’arrêt du traitement, la récidive est de règle. Une rhinite chronique bactérienne est toujours secondaire à une cause primitive, qu’il faut découvrir. La bactériologie est un examen relativement coûteux et totalement inutile lors de rhinite chronique. De même il est tentant de prescrire un scanner lors de rhinite chronique. Or cet examen réalisé sous anesthésie générale et relativement onéreux, risque d’être inutile en cas de rhinite infl ammatoire chronique, de corps étranger ou de fi stule oro-nasale, ou pas suffi samment spécifi que en cas d’aspergillose ou de tumeur. Si l’on suspecte une aspergillose, il est classique de demander une sérologie. Or les tests actuels peuvent donner 30 % de faux positifs. Le diagnostic d’aspergillose ne peut reposer sur une sérologie positive, que si d’autres éléments sont en faveur de l’affection (radiographies, rhinoscopie, biopsie). CE QU’IL FAUT FAIRE Recueillir les commémoratifs : circonstances d’apparition (après une promenade dans un champ, ou de manière progressive), unilatéralité ou bilatéralité, type morphologique du chien (brachycéphale ou dolichocéphale), nature du jetage (sang, sérosité, pus), traitements instaurés et résultats. • 113 • Faire un examen général soigneux : observation des ailes du nez (sténose, ulcération), du chanfrein (déformation, douleur), de la symétrie oculaire (tumeur), de la cavité buccale (palais, dentition), du larynx. Choisir les examens complémentaires dans un ordre qui tienne compte des hypothèses diagnostiques : radiographie, hématologie, rhinoscopie, scanner. LA RADIOGRAPHIE La radiographie constitue le premier examen permettant d’orienter le diagnostic. Elle se fait sous anesthésie générale. Radio de face, gueule ouverte, radio frontale pour l’examen des sinus frontaux, radio de profi l (2 trois-quarts) pour évaluer les racines dentaires. Habituellement, on note une densité augmentée en cas d’hyperplasie de la muqueuse, une diminution de la trame cartilagineuse en cas d’aspergillose, des images de densité augmentée accompagnées de lyse osseuse dans les tumeurs. Les corps étrangers radio opaques sont directement visualisés. Les accumulations de sang ou de pus dans les cavités nasales peuvent induire des erreurs. La radio frontale est indispensable pour juger de l’envahissement éventuel des sinus frontaux. La radio permet d’orienter le choix des autres examens complémentaires à réaliser. L’HÉMATOLOGIE ET LA SÉROLOGIE Ce sont les examens de choix si l’on suspecte une leishmaniose, une ehrlichiose, un trouble de la coagulation. LA RHINOSCOPIE La rhinoscopie permet le diagnostic direct de la plupart des affections nasales et son intérêt n’est plus à démontrer. Elle permet en outre de typer histologiquement les lésions observées, de prélever électivement une zone suspecte d’aspergillose, ou de retirer un éventuel corps étranger. Limites techniques : le matériel est cher, fragile. Chez les tout petits chiens, l’introduction du rhinoscope peut s’avérer diffi cile. Les sécrétions de pus ou le sang qui envahissent les cavités nasales rendent parfois la vision médiocre. Les zones proches de la lame criblée et les sinus ne sont pas observables. Limites diagnostiques : il est probable que certains diagnostics de « rhinite lymphoplasmocytaire » recouvrent d’autres entités, par exemple lorsque la biopsie est réalisée dans le pourtour d’une tumeur. LA TOMODENSITOMÉTRIE La tomodensitométrie, en évitant le phénomène de superposition propre à la radiographie, permet de visualiser le contenu des cavités nasales. Par son pouvoir de résolution élevé, elle distingue les structures parenchymateuses entre elles et les différencie des liquides. Elle permet dans certains cas un diagnostic direct (tumeur, aspergillose), En revanche elle peut être mise en défaut pour certains corps étrangers de petite taille. Son intérêt réside surtout dans le bilan d’extension des tumeurs, avant une intervention chirurgicale et/ou une radiothérapie. CONCLUSION Le diagnostic étiologique des rhinites chroniques est souvent diffi cile. Les examens complémentaires sont indispensables pour y parvenir. Le recueil des commémoratifs doit permettre d’ébaucher des hypothèses diagnostiques, et de déterminer les examens à proposer en priorité. La radiographie sera le plus souvent l’examen de base à effectuer en premier lieu. Même si elle ne permet pas de faire le diagnostic, elle permet de restreindre le nombre d’hypothèses. La rhinoscopie permet bien souvent le diagnostic complet, grâce aux prélèvements ciblés qu’elle autorise, voire le traitement, lors d’extraction de corps étrangers. Le scanner montre un pouvoir diagnostique moins important que la rhinoscopie mais il reste indispensable en cas de suspicion de tumeur dans l’évaluation de son extension. >< Confl its d’intérêts Néant. Les épanchements chyleux : traitement chirurgical J.-P. BILLET DMV, Cert. SAS, DECVS, MRCVS, Centre Hopitalier Vétérinaire Atlantia 22, rue Viviani F-44200 NANTES RAPPELS ANATOMIQUES La citerne du chyle est une dilatation volumineuse fusiforme. Elle draine la totalité de la lymphe des troncs lymphatiques lombaire et viscéral. Chez le chien, elle se situe au niveau de L1-L4 à droite, dorsale à l’aorte et bordée des piliers du diaphragme. Chez le chat, elle se situe au niveau de T13-L3, bordée des piliers de diaphragme. Le canal (ou conduit) thoracique part de la citerne passe à travers le diaphragme au niveau du hiatus aortique et passe dans le thorax. Chez le chien, le canal thoracique court le long de la paroi dorsale droite de l’aorte latéralement aux artères intercostales et à la veine azygos. Le canal passe à gauche de l’aorte au niveau de T5, puis se jette à la jonction entre la veine jugulaire gauche et la veine cave crâniale. Des variations existent avec la présence de vaisseaux collatéraux. Chez le chat, le canal thoracique court le long de la paroi dorsale gauche de l’aorte et se jette dans la
Page 1 and 2:
CONGRÈS AFVAC PARIS 2010 10-11-12
Page 3 and 4:
Page 5 and 6:
Page 7 and 8:
Page 9 and 10:
Page 11 and 12:
Page 13 and 14:
Page 15 and 16:
Page 17 and 18:
Page 19 and 20:
Page 21 and 22:
Page 23 and 24:
Page 25 and 26:
Page 27 and 28:
Page 29 and 30:
Page 31 and 32:
Page 33 and 34:
Page 35 and 36:
Page 37 and 38:
Page 39 and 40:
Page 41 and 42:
Page 43 and 44:
Page 45 and 46:
Page 47 and 48:
Page 49 and 50:
Page 51 and 52:
Page 53 and 54:
Page 55 and 56:
Page 57 and 58:
Page 59 and 60:
Page 61 and 62: CONGRÈS AFVAC PARIS 2010 10-11-12
Page 111: CONGRÈS AFVAC PARIS 2010 10-11-12
show all

Programme scientifique paris 2010 - AFVAC

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

Delete template?

Save as template?