1 1A 1B 22Figura 2.18. Morfotipos <strong>de</strong> miso i<strong>de</strong>ntificados en la colección <strong>de</strong>l Banco <strong>de</strong> Germoplasma <strong>de</strong> INIAP (Morillo, 1998). 1. Grupo 1: morfotipo blanco.1A: subgrupo A. 1B. subgrupo B. 2. Grupo 2, morfotipo violeta.Caracterización <strong>de</strong> la colección <strong>de</strong> zanahoriablanca. La zanahoria blanca es originaria <strong>de</strong> la zonaandina, quizá la única umbelífera domesticada en estaregión. Es recomendada para dietas <strong>de</strong> niños, ancianosy enfermos, pues posee cantida<strong>de</strong>s a<strong>de</strong>cuadas <strong>de</strong>calcio, hierro, fósforo, vitaminas y almidón <strong>de</strong> fácildigestibilidad.Mazón estudió, en 1993, la variabilidad genética <strong>de</strong> lacolección <strong>de</strong> zanahoria blanca mediante la utilización<strong>de</strong> <strong>de</strong>scriptores morfológicos, agronómicos eisoenzimáticos. En la evaluación <strong>de</strong> campo se utilizaron72 entradas <strong>de</strong> la colección nacional <strong>de</strong> zanahoria blanca<strong>de</strong> INIAP y, para el estudio isoenzimático, 95 entradas(77 <strong>de</strong> la colección ecuatoriana y 18 <strong>de</strong>l CentroInternacional <strong>de</strong> la Papa).Se evaluaron ocho <strong>de</strong>scriptores morfológicos y 10agronómicos para realizar análisis <strong>de</strong> frecuencias, medias,rangos, coeficientes <strong>de</strong> variación, <strong>de</strong>finición <strong>de</strong>morfotipos y análisis <strong>de</strong> agrupamiento (Average LinkageCluster Analysis).ABPara el estudio electroforético, se utilizó el sistema <strong>de</strong>corrida Hisitidina-Citrato, pH 7.0, con geles <strong>de</strong> almidónal 12,5 % para los sistemas isoenzimáticos EST, PGI y PGM.En función <strong>de</strong> los caracteres morfológicos color <strong>de</strong>l haz,bor<strong>de</strong> rojo <strong>de</strong> la hoja, color <strong>de</strong>l pecíolo, color <strong>de</strong> la base<strong>de</strong>l pecíolo, color <strong>de</strong> la corteza <strong>de</strong> la raíz, color principaly secundario <strong>de</strong> la pulpa, se <strong>de</strong>finieron 17 morfotipos.Como resultado <strong>de</strong>l análisis <strong>de</strong> agrupamiento, seobtuvieron 21 grupos diferentes, contenidos en 5gran<strong>de</strong>s grupos. Cada uno <strong>de</strong> los grupos incluyóaccesiones correspondientes a las tres formas hortícolasi<strong>de</strong>ntificadas para zanahoria blanca: blanca, amarilla ymorada (Figura 2.19); se <strong>de</strong>terminó que existe un129 % <strong>de</strong> variabilidad <strong>de</strong>ntro <strong>de</strong> la colección.CFigura 2.19. Formas hortícolas <strong>de</strong> zanahoria blanca i<strong>de</strong>ntificadas en lacolección <strong>de</strong>l Banco <strong>de</strong> Germoplasma <strong>de</strong> INIAP (Mazón, 1993). A. Formahortícola morada. B. Forma hortícola blanca, y C. Forma hortícolaamarilla.Manejo y Conservación <strong>de</strong> RTAs59
Grupo 1. Conformado por la entrada ECU-1 179, quecorrespon<strong>de</strong> al morfotipo (MT) 16 <strong>de</strong> forma hortícolamorada y <strong>de</strong>finido como M1.Grupo 2. Contiene las entradas ECU-2 315 y ECU-1 180, pertenecientes al MT 1 y forma hortícola “blanca”,B1.Grupo 3. La mayoría <strong>de</strong> las entradas pertenecen a laforma hortícola morada y está subdividida en cuatrosubgrupos: M2: ECU-1 129, ECU-1 225 (MT 17). M3:ECU-3 295, ECU-1 200, ECU-1 217, ECU-1 218 (M15),ECU-1 201 (MT 16). M4: ECU-1 178, ECU-1 173 (MT15). M5: ECU-1 222, ECU-1 216, ECU-1 193 (MT 13).Grupo 4. En este grupo se encuentran tres entradas<strong>de</strong> la forma hortícola amarilla, dividida en dossubgrupos: A1: ECU-1 187 (MT 11). A2: ECU-1 227, ECU-1 188 (MT 11).Grupo 5. Se conglomeran 54 entradas, correspondientesa las formas hortícolas blanca y amarilla. Lasamarillas se divi<strong>de</strong>n en los tres siguientes subgrupos:A3: ECU-1 153, ECU-1 208 (MT 8), ECU-1 207 (MT 9).A4: ECU-1 221, ECU-1 220 (MT 12), ECU-1 154 (MT10). A5: ECU-1 183, ECU-1 181, ECU-1 155, ECU-1 189,ECU-2 319, ECU-1 167, ECU-1 199, ECU-1 231, ECU-1 192, ECU-1 230, ECU-1 228, ECU-1 207(MT 10).Las blancas se divi<strong>de</strong>n en dos subgrupos: <strong>de</strong>s<strong>de</strong> B2hasta B6, pertenecen al primer subgrupo, y <strong>de</strong> B7 aB11, al segundo: B2: ECU-1 219 (MT 4), ECU-1 195 (MT8). B3: ECU-1 169 (MT 4), ECU-1 186 (MT 8), ECU-1 182(MT 3). B4: ECU-1 171, ECU-1 164 (MT 2). B5: ECU-1 184 (MT 3). B6: ECU-1 196 (MT 2), ECU -1 176, ECU-1 159, ECU-1 214, ECU-1 160, ECU-1 158 (MT 3). B7:ECU-1 172 (MT 6), ECU-1 168, ECU-1 185, ECU-2 361,ECU-1 176, ECU-1 175 (MT 5). B8: ECU-1 223 (MT 7),ECU-1 209, (MT6) ECU-1 163 (MT 7). B9: ECU-1 226(MT 5), ECU-2 484, ECU-1 157 (MT 6). B10: ECU-1 210,ECU-1 174, ECU-1 197, ECU-1 224, ECU-1 194, ECU-1 161 (MT 7). B11: ECU-1 162, ECU-1 234, ECU-1 232,ECU-1 206 (MT 5).Para EST se i<strong>de</strong>ntificaron tres zimotipos, en tanto que,para PGI y PGM, se <strong>de</strong>tectaron dos zimotipos. Uno <strong>de</strong>los zimotipos para PGM se presentó, invariablemente,en las entradas colectadas en estado “cultivartradicional”, y el restante se i<strong>de</strong>ntificó en una entradacolectada en estado “silvestre”. Se <strong>de</strong>terminó queexiste muy baja variabilidad isoenzimática (4 %) <strong>de</strong>ntro<strong>de</strong>l material “cultivado” <strong>de</strong> zanahoria banca, <strong>de</strong>bido,quizá, a que es una especie que se propagavegetativamente (rara floración y escasa producción<strong>de</strong> semilla sexual) y que su variabilidad fenotípicapodría ser el resultado <strong>de</strong> la adaptación <strong>de</strong>l genotipoa diversos medioambientes o a mutaciones somáticas.Caracterización <strong>de</strong> la colección <strong>de</strong> achira. Lacaracterización morfológica, la evaluación agronómicay la molecular <strong>de</strong> la colección nacional <strong>de</strong> achira incluyó32 entradas. En el campo, se registraron datos para 32<strong>de</strong>scriptores morfológicos y agronómicos. Con respectoa la fase molecular, se realizó un screening con 120primers o partidores y se seleccionaron 17 <strong>de</strong> ellos. Lasamplificaciones se hicieron con 11 partidores quepresentaban polimorfismos, y se utilizaron las 32entradas <strong>de</strong> campo, <strong>de</strong> las cuales se seleccionaron nuevepartidores por ser altamente polimórficos, un numero<strong>de</strong> bandas promedio por partidor <strong>de</strong> cinco y un númerototal <strong>de</strong> bandas polimórficas <strong>de</strong> 48. Con estos resultados,se construyó una matriz <strong>de</strong> similitud y se elaboró un<strong>de</strong>ndrograma (NTSYS) (Figura 2.20) en el cual se<strong>de</strong>terminaron tres grupos principales. La Figura 2.21muestra parte <strong>de</strong> la diversidad existente <strong>de</strong>ntro <strong>de</strong> lacolección <strong>de</strong> achira.Relación <strong>de</strong> la conservación ex situ con laconservación en fincas <strong>de</strong> agricultoresHasta aquí hemos <strong>de</strong>scrito las activida<strong>de</strong>s <strong>de</strong>conservación ex situ y en fincas, <strong>de</strong> manera que pue<strong>de</strong>nparecer dos tipos <strong>de</strong> conservación alternativas. Pero enrealidad estas metodologías son complementarias,puesto que ninguna <strong>de</strong> las dos es perfecta. Comoejemplos, po<strong>de</strong>mos mencionar que los procesoscoevolutivos con plagas y enfermeda<strong>de</strong>s que tiene uncultivo en el campo es <strong>de</strong>tenido en un banco <strong>de</strong>germoplasma; por otro lado, existe mayor peligro <strong>de</strong>pérdida <strong>de</strong> materiales en el campo <strong>de</strong> agricultores queen un banco <strong>de</strong> germoplasma, pues es un procesodinámico, influenciado por diferentes factores bióticosy abióticos. Por lo tanto, a continuación <strong>de</strong>scribimos lasactivida<strong>de</strong>s <strong>de</strong>ntro <strong>de</strong>l proyecto integral, en las que seevi<strong>de</strong>ncia la complementariedad <strong>de</strong> los dos sistemas<strong>de</strong> conservación.Jardines <strong>de</strong> conservaciónComo se mencionó con anterioridad, para la restitución<strong>de</strong> germoplasma <strong>de</strong>s<strong>de</strong> el banco ex situ ubicado en elINIAP-DENAREF, se i<strong>de</strong>ntificaron los sitios o comunida<strong>de</strong>smediante un diagnóstico <strong>de</strong> la región (recopilación yanálisis <strong>de</strong> diagnósticos previos y levantamiento <strong>de</strong>información complementaria a través <strong>de</strong> encuestas ytécnicas participativas (UVTT, 1998).Se empleó un enfoque <strong>de</strong> fitomejoramientoparticipativo mediante el uso <strong>de</strong> varieda<strong>de</strong>s locales,6 0 <strong>Raíces</strong> y <strong>Tubérculos</strong> <strong>Andinos</strong>
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