[download]13,2 Mb - Eco - Tiras

ПОДДЕРЖАНИЕ БИОРАЗНООБРАЗИЯ ДНЕСТРА МЕТОДОМ КРИОКОНСЕРВАЦИИ.СООБЩЕНИЕ 3. КРИОГЕННЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ БЕЛКОВ И ЛИПИДОВНА ЭТАПАХ КОНСЕРВАЦИИ СПЕРМЫ КАРПАГ.В. Борончук, И.В. Балан, Н.В. РошкаИнститут физиологии и санокреатологии АН МолдовыKEEPING THE BIODIVERSITY IN NISTRU USING THE CRYOCONSERVATION METHODSPEAKING 3: CRYOGENIC CHANGES WHEN PRESERVING THE CRAP’S SPERMGh. Boronciuc, I. Balan, N. RoşcaUsing the cryopreservation technology of the carp’s sperm, in output conditions, allows to obtain a 77,0±3,0% roe’s fertilizing and 60,0±3,5%viable grub’s outlet.ВведениеРеализация достижений современной криобиологиив подержании биоразнообразия ихтиофауныДнестра и рыбном хозяйстве страны имеет значительнуюперспективу. В частности, создание низкотемпературногокриобанка половых продуктов, эмбрионови личинок рыб позволит сохранить ценный генетическийматериал на протяжении длительного времени.Криоконсервирования спермы высокоценных производителейможет найти широкое применение в селекционо–племеннойработе с различными культивированнымивидами рыб, как объектами аквакултуры [4].Существенный вклад решение проблемы криоконсервацииспермы карпа и других ценных и находящихсяна грани исчезновения видов рыб вносят исследователисоседних государств – России и Украины [1,2, 5].В предыдущих двух сообщениях мы изложилирезультаты изучения криогенных изменений белкови липидов, как составных компонентов плазматическихмембран сперматозоидов карпа. Представилиновый состав криозащитной среды и оптимальныепараметры, при которых данная среда проявляет максимальныйзащитный эффект. Целью проведенныхисследований, результаты которых представляютсяв заключительном сообщении было – провести производственноеиспытание разработанной технологиикриоконсервации спермы карпа.Материалы и методы исследованияОпыты проведены на Кучурганской научно–производительнойбазе Института зоологии АН Молдовы, сиспользованием спермы карпа Cyprinus carpio, полученнойпосле инъекции гипофизарных экстрактов поГербильскому [3]. Икра получена от самца весом 7 кгв возрасте 6 лет.После деконсервации спермы её смешивали с икройсухим методом (1:100), а затем высевали в водуна маркированные чашки Петри, размещенные на дне0,6 л. стаканов через 10 – 15 мин. после осеменениячашки Петри перенесены в аппарате Вейса и вертикальнозафиксированы в специальных держателях.В аппаратах Вейса поддерживали условия аналогичныепромышленным нормативам: температура водыравна 22–23 °С, содержание кислорода – 7–8,5 мг/л,проточность 3л/мин.В период инкубации икры в аппаратах Вейса проведенынаблюдения за качеством оплодотворения икрыи визуально рассчитан процент оплодотворенной икрына этапе дробления яйцеклетки. Кроме того, определенпроцент смертности яйцеклеток на этапе гаструляциии стадии обособления хвостового отдела желточногомешка (соответствующий этап органогенеза).С началом двигательной активности эмбрионапроводились наблюдения за интенсивностью движениязародышей в опытной и контрольных вариантах.Перед началом выклева эмбрионов из икры чашкиПетри с прикреплённой икрой были перенесеныв специальные микроинкубаторы, обеспечивающиенормальные условия выдерживания предличинок.В процессе выдерживания в микроинкубаторахбыли определены: процент смертности эмбрионов настадии выклева, процент предличинок с отклонениямиот нормального развития (уродство) на этапе эмбриогенезасогласно общеизвестным методическим положениям[6]. Рассчитан процент выхода деловых личинокот нативных и замороженных сперматозоидах карпа.В качестве контрольного промышленного вариантапроведено инкубация в аппаратах Вейса, а модельноговарианта в лабораторных условиях с использованиемнативной спермы. В опытном варианте инкубированиепроводилось без аппарата Вейса при осеменение икрыкриоконсервированой спермы карпа.Статистической обработкой проводили с применениесовременных программ Excel, статистика и др.Результаты исследований и их обсуждениеАнализируя информацию о биогидроресурсахбассейна Днестра следует отметить неоценимыйвклад при изучении этого вопроса академиков М.Ф.Ярошенко, И.К. Тодераша, профессора Ф.П. Чорика[9] нам более ясно представляется необходимостьсохранения биоразнообразия ихтиофауны Днестра.Результаты проведенных нами исследования представленыв таблице.Данные, представленные в таблице показывают,что разработанная технология позволяет достигнутьмаксимальной оплодотворяемости икринок, составляющей77,0±3,0 %, а выводимости жизнеспособныхличинок – 60,0±3,5% (третья серия опытов), вместе стем, во второй и первой серии изучаемые показателизначительно ниже, что свидетельствует о индивидуальнойособенности икры, так как она от всех трех самокосеменялась спермой одного самца. Аналогичныеиндивидуальные особенности выявлены у спермыкарпа, когда икра одной самки осеменялась спермойразличных трех самцов.Кроме того, из данной таблицы следует что, криконсервацияспермы карпа оказывает достоверноевлияния только на процент оплодотворенных яйцеклетоки выход жизнеспособных личинок.— 23 —