Dissertation Klaus Heitkamp 1999
Dissertation Klaus Heitkamp 1999
Dissertation Klaus Heitkamp 1999
Erfolgreiche ePaper selbst erstellen
Machen Sie aus Ihren PDF Publikationen ein blätterbares Flipbook mit unserer einzigartigen Google optimierten e-Paper Software.
III6.5.4 Hydroperoxide des Linolensäuremethylesters aus der photosensibilisiertenOxidation .......................................................................................................... 1396.5.5 13S-Hydroperoxyoctadeca-9(Z),11(E)-diensäure ............................................. 1406.5.6 13S-Hydroperoxyoctadeca-9(Z),11(E)-diensäuremethylester........................... 1426.5.7 13S-Hydroperoxyoctadeca-9(Z),11(E)-triensäure............................................. 1436.5.8 13S-Hydroperoxyoctadeca-9(Z),11(E),15(Z)-triensäuremethylester ................ 1446.5.9 13S-(1-Methoxy-1-methylethylperoxy)-octadeca-9(Z),11(E)-diensäuremethylester........................................................................................................1456.5.10 13S-(1-Methoxy-1-methylethylperoxy)-octadeca-9(Z),11(E)-diensäure.......... 1476.5.11 2-[13S-(1-Methoxy-1-methylethylperoxy)-octadeca-9(Z),11(E)-dienoyl]-1,3-dilinolein..................................................................................................... 1486.5.12 2-[13S-Hydroperoxy-octadeca-9(Z),11(E)-dienoyl]-1,3-dilinolein .................. 1506.6 Schematischer Aufbau der verwendeten HPLC-Anlagen...................................... 1516.6.1 Normalphasen-HPLC mit UV-Detektion.......................................................... 1516.6.2 Entwicklung und Optimierung eines Nachsäulenderivatisierungssystem fürdie Normalphasen-HPLC.................................................................................. 1516.6.3 Normalphasen-HPLC mit Nachsäulenderivatisierung und UV/VIS-Detektion 1526.6.4 Modifiziertes HPLC-System für Aktivitätsuntersuchungen von Enzymreaktoren........................................................................................................... 1526.6.5 Umkehrphasen-HPLC mit gleichzeitiger UV/VIS- und Fluoreszenzdetektionbei Verwendung des Enzymreaktors (2-Pumpen-System)................................ 1536.6.6 Umkehrphasen-HPLC mit UV/VIS- und Fluoreszenzdetektion bei Verwendungdes Enzymreaktors (3-Pumpen-System)................................................. 1546.6.7 Umkehrphasen-HPLC mit nichtenzymatischer Nachsäulenderivatisierungund UV/VIS-Detektion ..................................................................................... 1556.7 Lineare statistische Optimierung ........................................................................... 1566.7.1 Mathematische Grundlagen .............................................................................. 1566.7.2 Versuchspläne................................................................................................... 1606.7.3 Optimierungsergebnisse.................................................................................... 1646.8 Bestimmung der Trägerbelegung bei der Immobilisierung von Mikroperoxidasemittels der Atomabsorptionsspektrometrie ........................................................... 1696.9 Bestimmung oxidierter Pflanzenöle ...................................................................... 1716.9.1 Meßwerte FOX2-Test ....................................................................................... 1716.9.2 Kalibriergeraden und Meßwerte der HPLC-Bestimmung mit UV- undFluoreszenzdetektion ........................................................................................ 1726.9.3 Kalibriergerade und Meßwerte der HPLC-Bestimmung mitnichtenzymatischer Nachsäulendetektion ......................................................... 1756.10 Literaturverzeichnis ............................................................................................... 177