Funktionelle Analyse von Proteinen der Gpr1/Fun34/yaaH ...
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A<br />
B<br />
OD600<br />
8<br />
7<br />
6<br />
5<br />
4<br />
3<br />
2<br />
1<br />
0<br />
0 10 20 30<br />
t in h<br />
Ydr384cp-HA(1)<br />
Ydr384cp-HA(2)<br />
0h 12h 14h 16h 18h 20h 22h 24h<br />
Ergebnisse<br />
Abb. 30: Expression des mit dem HA-Tag fusionierten Ydr384cp im Stamm YN während<br />
des Wachstums <strong>der</strong> Transformanden in Minimalmedium mit Glucose. Die Vorkulturen<br />
wurden üN in MG-Flüssigmedium geschüttelt, einmal mit 1 x Rea<strong>der</strong>salzen<br />
gewaschen und die Hauptkulturen mit unterschiedlichen OD600 (1: OD600 = 0,7/ 2:<br />
OD600 = 1,4) angeimpft. Zu den angegebenen Zeitpunkten wurden jeweils 50 ml<br />
Kultur entnommen, die Zellen abzentrifugiert und aufgeschlossen. In A) sind die<br />
Wachstumskurven und in B) die entwickelten Western-Blots mit den Ponceau-S<br />
gefärbten Membranen dargestellt. Die Pfeile markieren den Zeitpunkt, an dem<br />
keine Glucose mehr im Medium nachweisbar war.<br />
3.3.13.2 Expression in Minimalmedium mit verschiedenen C-Quellen<br />
YN/p416YDR-HA(1)<br />
YN/p416YDR-HA(2)<br />
Zeitpunkt, ab dem<br />
keine Glucose im Medium<br />
nachweisbar war<br />
Weiterhin sollte die Induktion <strong>der</strong> Expression <strong>der</strong> Homologen durch ausgewählte C-Quellen<br />
untersucht werden. Zu diesem Zeitpunkt waren Acetat und Ethanol als Hauptinduktoren für<br />
die GPR1-Expression bekannt (Augstein, 2001), deshalb wurde die Expression, neben Minimalmedium<br />
ohne C-Quelle, auf diesen beiden C-Quellen untersucht.<br />
Der Stamm YN wurde 4 h auf Minimalmedium mit Glucose kultiviert, welche die Expression<br />
<strong>der</strong> Homologen reprimiert. Danach wurden die Zellen in Minimalmedium mit unterschiedlichen<br />
C-Quellen umgesetzt. Die Ergebnisse <strong>der</strong> Northern-Blots sind in Abb. 31 dargestellt.<br />
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