Funktionelle Analyse von Proteinen der Gpr1/Fun34/yaaH ...
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Material und Methoden<br />
Die RNA-Konzentration und –Reinheit wurde mittels Absorptionsmessung bei OD260 und<br />
OD280 ermittelt (OD260:OD280 sollte ca. 2 betragen, 1 OD260 = 40 ng/µl). In allen Proben wurde<br />
die RNA-Konzentration auf 3 µg/µl eingestellt und die Proben bei -20 °C aufbewahrt.<br />
Phenol:Chloroform:Isoamylalkohol (25:24:1): Phenol pH4,2 (SIGMA P-4682)<br />
Extraktionspuffer: EDTA 1 mM<br />
LiCl 100 mM<br />
SDS 1 % (w/v)<br />
Tris-HCl (pH7,5) 100 mM<br />
2.9.9 Northern-Hybridisierung<br />
Elektrophorese und Kapillarblot<br />
Für das Agarosegel wurde 1 % (w/v) Agarose in 1 x NBC gelöst. Nachdem die Gellösung auf<br />
60 °C abgekühlt war, wurde 37%iges Formaldehyd (2 ml pro 80 ml) zugegeben und die Lösung<br />
in die Gel-Apparatur gegossen. Zur Equilibrierung des Gels und Zerstörung vorhandener<br />
RNasen fand ein 15minütiger Vorlauf statt.<br />
Zu 2,5 µl RNA-Lösung (3 µg/µl) wurden 8,5 µl Ladepuffer II zugegeben und die Proben 5 min<br />
bei 70 °C denaturiert, danach wurden diese sofort für 5 min auf Eis abgekühlt. Die RNA-<br />
Proben wurden auf das Gel aufgetragen und bei 10 V/cm aufgetrennt. Zur Entfernung des<br />
Formaldehyds im Gel wurde dies anschließend 2 x 10 min mit dH2O gewaschen. Danach<br />
erfolgte eine 10minütige Inkubation des Gels in 10 x SSC. Der Transfer <strong>der</strong> RNA auf die Hybond-N+<br />
(Amersham Biosciences) erfolgte üN mittels Kappilarblotting unter Verwendung <strong>von</strong><br />
10 x SSC. Nachdem die Membran in 2 x SSC gewaschen wurde, erfolgte die Fixierung <strong>der</strong><br />
RNA mittels UV-Crosslinking (2 x 125 mJoule).<br />
Prähybridisierung und Hybridisierung<br />
Die Prähybridisierung erfolgte in Hybridisierungspuffer für 2 h bei 65 °C. In dieser Zeit wurden<br />
die Sonden mit Hilfe des „Megaprime TM DNA labelling systems“ (Amersham Biosciences)<br />
nach Angaben des Herstellers markiert. Für die Markierung <strong>der</strong> Sonden wurde die DNA<br />
mittels PCR gewonnen (Tab. 9). Die markierte Sonden-DNA wurde über eine Säule (NICK<br />
columns <strong>der</strong> Firma Amersham Biosciences) gereinigt und die Radioaktivität bestimmt. Es<br />
wurden <strong>von</strong> <strong>der</strong> markierten Sonden-DNA 1 Million cpm für die Hybridisierung eingesetzt. Die<br />
markierte Sonde wurde 5 min bei 100 °C denaturiert und anschließend auf Eis abgekühlt.<br />
Nach <strong>der</strong> Zugabe <strong>der</strong> Sonde erfolgte die Hybridisierung bei 65 °C üN im Hybridisierungsofen.<br />
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