Funktionelle Analyse von Proteinen der Gpr1/Fun34/yaaH ...

Einleitung
Steensma, 2003). Die Doppelmutante (Δacs1Δacs2) von S. cerevisae bzw. K. lactis ist nicht
mehr lebensfähig (van den Berg and Steensma, 1995; Zeeman and Steensma, 2003). Ein
ACS2 orthologes Gen konnte aus Z. bailii kloniert werden. Die Expression dieses Gens in
S. cerevisiae beeinflusste die spezifische Wachstumsrate in Minimalmedium mit Glucose/Acetat
als C-Quellen im Vergleich zum Wildtypstamm nicht. Allerdings konnte eine geringfügige
Verkürzung der lag-Phase in Medium mit Glucose/Acetat (Acetatkonzentration: 0,1 bis
0,35 %) beobachtet werden. War die Acetatkonzentration höher als 0,35 %, so zeigten die
Zellen beider Stämme eine signifikant längere lag-Phase (Rodrigues et al., 2004).
Gluconeogenese
Purine
Phospholipid
Methionin
Cystein
Tryptophan
Thymidilat
Methyltetrahydrofolat
Oxalacetat
Citrat
Malat-
Aconitase
Dehydrogenase
Isocitratlyase
Isocitrat
Malat Glyoxylat
Isocitrat-
Malatsynthase
Dehydrogenase
Fumarase
Fumarat
Succinat-
Dehydrogenase
Succinat
ALD
ADH
Acetat Acetaldehyd Ethanol
Acetyl-CoA-
Synthetase β-Oxidation
Acetyl-CoA
Fettsäure
Succinyl-CoA-
Synthetase
Serin
Citratsynthase
Succinyl-CoA
Glycin Häm
α-Ketoglutarat
α-Ketoglutarat-
Dehydrogenase
Abb. 2: Schematische Darstellung des Citrat- und Glyoxylatzyklus und deren Einbindung in
den Zellstoffwechsel nach Kujau et al. (1992), Lorenz and Fink (2001), Lorenz and
Fink (2002) und Schüller (2003). Reaktionen und Enzyme, die für den Glyoxylatzyklus
spezifisch sind, wurden rot dargestellt. Die jeweiligen Enzyme werden in
S. cerevisiae von folgenden Genen codiert: ADH = Alkoholdehydrogenase (ADH2),
ALD = Aldehyd-Dehydrogenase (ALD6), Acetyl-CoA-Synthetase (ACS1, 2), Citratsynthase
(CIT1-3), Aconitase (ACO1), Isocitratlyase (ICL1), Malatsynthase (MLS1),
Isocitrat-Dehydrogenase (IDH1, 2; IDP1), α-Ketoglutarat-Dehydrogenase (KGD1, 2;
LPD1), Succinyl-CoA-Synthetase (LCS1, 2), Succinat-Dehydrogenase (SDH1-4),
Fumarase (FUM1), Malat-Dehydrogenase (MDH1-3).
CO 2
CO 2
12