Extraktion von Lebensmitteln und Bedarfsgegenständen
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<strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> <strong>Lebensmitteln</strong> <strong>und</strong> <strong>Bedarfsgegenständen</strong> mit Hilfe <strong>von</strong> überkritischem CO2<br />
3.1.3.1 Zerkleinerung (Erzeugung repräsentativer Teilproben) 32<br />
3.1.3.2 Entfernung bzw. Immobilisierung <strong>von</strong> Wasser 35<br />
3.1.3.2.1 Wasserentfernung durch Gefriertrocknung 35<br />
3.1.3.2.2 Wasserbindung durch Adsorbentien 35<br />
3.1.4 SFE-MULTIMETHODEN FÜR PESTIZIDE IN OBST UND GEMÜSE 36<br />
3.1.4.1 Optimierung der <strong>Extraktion</strong>sbedingungen 36<br />
3.1.4.2 Durchführung der Multimethode 39<br />
3.1.4.3 Wiederfindungsversuche 41<br />
3.1.4.3.1 Vorgehensweise bei Dotierungen 41<br />
3.1.4.3.2 Wiederfindungen mit HP 7680T 41<br />
3.1.4.3.3 Wiederfindungen mit ISCO SFX 3560 46<br />
3.1.4.4 Nachweis- <strong>und</strong> Bestimmungsgrenzen 47<br />
3.1.4.5 Methodenvergleich 48<br />
3.1.4.6 Matrixbezogene Multimethoden 51<br />
3.1.4.6.1 Pestizide in Zitrusfrüchten 51<br />
3.1.4.6.2 Pestizide in Kernobst 54<br />
3.1.4.6.3 Pestizide in Beerenobst 55<br />
3.1.4.6.4 Pestizide in Tafeltrauben 56<br />
3.1.4.7 Einflüsse verschiedener Parameter auf die <strong>Extraktion</strong>sausbeuten 59<br />
3.1.4.7.1 Einfluß der Zerkleinerung auf die Probenhomogenität 59<br />
3.1.4.7.2 Einfluß der Polarität der Analyten auf die Extrahierbarkeit 59<br />
3.1.4.7.3 Einfluß des Wassergehaltes auf die Extrahierbarkeit unpolarer Analyten 60<br />
3.1.4.7.4 Abbau <strong>von</strong> Pestiziden während der Lagerung im Autosampler 62<br />
3.1.5 ENTWICKLUNG VON SCHNELLEN BESTIMMUNGSMETHODEN FÜR SPEZIELLE<br />
PESTIZIDKLASSEN MIT ANALYTISCHEN DEFIZITEN 64<br />
3.1.5.1. Einleitung 64<br />
3.1.5.2 Naßchemische Untersuchungen im Vorfeld 65<br />
3.1.5.2.1 Rolle des pH-Wertes bei <strong>Extraktion</strong> <strong>und</strong> Flüssig-Flüssig-Verteilung 65<br />
3.1.5.2.2 Wechselwirkungen <strong>von</strong> Wirkstoffen mit Oberflächen 65<br />
3.1.5.3 Pestizide mit basischen Eigenschaften 70<br />
3.1.5.3.1 Einfluß des pH-Wertes auf die Extrahierbarkeit (vgl. Kap. 3.1.4.7.2) 70<br />
3.1.5.3.2 Carbendazim, Benomyl <strong>und</strong> Thiophanat-Methyl 73<br />
3.1.5.3.2.1 Umwandlung <strong>von</strong> Benomyl zu Carbendazim 74<br />
3.1.5.3.2.2 Thiophanat-Methyl 76<br />
3.1.5.3.2.3 Derivatisierung <strong>von</strong> Carbendazim mit PFB-Br im GC-Vial 81<br />
3.1.5.3.2.4 Bestimmung mittels GC-MSD 81<br />
3.1.5.3.2.5 Validierung 82<br />
3.1.5.3.2.6 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> „gewachsenen“ Carbendazim-Rückständen aus<br />
Keltertrauben 83<br />
3.1.5.3.2.7: SFE- <strong>und</strong> DFG-Methode zur Bestimmung der Carbendazim-Gruppe im<br />
Kostenvergleich 84<br />
3.1.5.4 Saure Pestizide 86<br />
3.1.5.4.1 Einführung 86<br />
3.1.5.4.2 2,4-D-Rückstände in Zitrusfrüchten 86<br />
3.1.5.4.3 <strong>Extraktion</strong> <strong>von</strong> freiem 2,4-D 87<br />
3.1.5.4.4 Freisetzung <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enen 2,4-D-Rückständen 87<br />
3.1.5.4.5 Derivatisierungsmöglichkeiten <strong>von</strong> Phenoxyalkancarbonsäuren 89<br />
3.1.5.4.6 Bestimmung mittels GC-MSD 92<br />
3.1.5.4.7 Validierung 93<br />
3.1.5.4.8 Behandlung <strong>von</strong> Zitronen mit 2,4-D <strong>und</strong> Lagerungsversuch 94<br />
3.1.5.4.9 Freisetzung <strong>von</strong> geb<strong>und</strong>enem 2,4-D aus Zitrusfrüchten bei simulierter<br />
Verdauung <strong>und</strong> simulierter Verarbeitung 97<br />
3.1.5.5 N-Methyl-Carbamate 100<br />
3.1.5.5.1 Einführung 100<br />
3.1.5.5.1.1 Analytik 103<br />
Chemisches <strong>und</strong> Veterinäruntersuchungsamt Stuttgart, Sitz Fellbach<br />
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