THESE Maryse Bonnin Jusserand - Université de Bourgogne
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Résultats<br />
quatre pour le cluster hdc porté par un plasmi<strong>de</strong>. De plus, la putrescine est l’amine biogène<br />
majoritaire du vin (Marcobal et al, 2005 ; Mangani et al, 2005).<br />
B. La putrescine dans la résistance au stress aci<strong>de</strong> chez O. oeni<br />
De même que pour l’étu<strong>de</strong> du rôle <strong>de</strong> l’histamine dans l’hypothèse <strong>de</strong> la lutte contre le<br />
stress aci<strong>de</strong> chez O. oeni, la fonction <strong>de</strong> la synthèse <strong>de</strong> putrescine à également été explorée.<br />
Contrairement aux gènes <strong>de</strong> la voie HDC portés par un plasmi<strong>de</strong>, les gènes <strong>de</strong> la voie<br />
ODC <strong>de</strong> O. oeni sont localisés au niveau chromosomiques (Marcobal et al, 2004, 2006). La<br />
stratégie d’interrompre le gène odc par simple recombinaison homologue a d’abord été tentée.<br />
Pour cela le vecteur pGID701 (Oraby, 2002), dérivé du pORI19 a été utilisé. Une région<br />
interne <strong>de</strong> odc a été clonée dans ce vecteur et le pGID701-odc ainsi obtenu (Figure 30) a été<br />
transféré dans la souche O. oeni BR14/97 (Guerrini et al, 2002) portant les gènes odc et potE.<br />
Des transformants ont été obtenus mais aucun mutants. Cela peut s’expliquer par plusieurs<br />
raisons. Tout d’abord, le premier frein à l’obtention <strong>de</strong> mutants est l’efficacité <strong>de</strong><br />
transformation qui n’est pas suffisamment élevée par rapport à cette stratégie. Ensuite, la<br />
stratégie <strong>de</strong> mutation par simple recombinaison homologue n’est peut être pas bien adaptée.<br />
En effet, lors d’une étu<strong>de</strong> sur l’interruption <strong>de</strong> gènes par recombinaison homologue chez<br />
Thermococcus kodakaraensis, une archée hyperthermophile, Sato et al (2003) n’obtiennent<br />
aucune mutation par simple crossing-over. Cependant, une interruption du gène ciblé a été<br />
obtenue par double recombinaison. L’échec dans l’obtention <strong>de</strong> mutant par une approche en<br />
simple recombinaison serait dû au clivage par le système <strong>de</strong> restriction/ modification (RM) <strong>de</strong><br />
l’ADN circulaire. Les systèmes <strong>de</strong> RM sont avant tout un moyen <strong>de</strong> défense <strong>de</strong>s bactéries<br />
contre l’ADN hétérologue. Ils regroupent <strong>de</strong>s méthylases et <strong>de</strong>s enzymes <strong>de</strong> restriction.<br />
Chaque souche bactérienne possè<strong>de</strong> un profil <strong>de</strong> méthylation propre <strong>de</strong> son ADN, et l’ADN<br />
exogène, qui possè<strong>de</strong> un profil <strong>de</strong> méthylation différent, est dégradé par les enzymes <strong>de</strong><br />
restriction. Aussi, la méthylation in vitro <strong>de</strong> plasmi<strong>de</strong>s est envisagée pour augmenter<br />
l’efficacité <strong>de</strong> transformation. Ce moyen a permis <strong>de</strong> transformer Helicobacter pylori<br />
(Donahue et al, 2000) ainsi que Bacillus cereus (Groot et al, 2008). Il serait peut être possible<br />
d’envisager cette stratégie chez O. oeni.<br />
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