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THESE Maryse Bonnin Jusserand - Université de Bourgogne

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Annexes<br />

mécanismes, en particulier ceux relatifs à la famille <strong>de</strong>s auxines. Mais l’étu<strong>de</strong> fonctionnelle<br />

<strong>de</strong>s gènes <strong>de</strong> O. oeni, passe par une maîtrise <strong>de</strong> la manipulation génétique <strong>de</strong> cette bactérie.<br />

D’une part, nous ne disposons pas d’outils permettant <strong>de</strong> muter cette bactérie, d’autre part,<br />

l’expression <strong>de</strong>s gènes <strong>de</strong> O. oeni en système hétérologue est difficile à mettre en place, au<br />

regard <strong>de</strong>s échecs obtenus. En ce qui concerne l’expression <strong>de</strong> transporteurs, cela peut<br />

s’expliquer par exemple, par un mauvais adressage et repliement <strong>de</strong>s protéines dans la<br />

membrane.<br />

MATERIELS ET METHODES<br />

Obtention <strong>de</strong>s plasmi<strong>de</strong>s pNZmleP, pNZmaeP et pNZyaeP à partir <strong>de</strong> L. lactis NZ9000<br />

Des précultures sont réalisées à partir du stock glycérol <strong>de</strong> L. lactis NZ9000 contenant<br />

les vecteurs pNZmleP, pNZmaeP ou pNZyaeP en M17 et chloramphénicol 10 µg. µL -1 . Afin<br />

d’extraire les plasmi<strong>de</strong>s, 2 mL <strong>de</strong> culture sont centrifugés pendant 1 min à 12.000 rpm. 200<br />

µL <strong>de</strong> tampon 1 (kit GeneElute Plasmid Miniprep, Sigma) sont ajoutés ainsi que 10 mg.mL -1<br />

<strong>de</strong> lysozyme. La réaction est incubée 15 min à 50°C, puis l’extraction est poursuivie selon les<br />

recommandations du fournisseur (Sigma).<br />

Préparation <strong>de</strong> cellules compétentes pour L. plantarum<br />

Cinq cent mL <strong>de</strong> milieu MRS préchauffé à 37°C sont inoculé à DO600nm= 0,15 à partir<br />

d’une préculture réalisée 24h avant l’ensemencement. La culture est incubée statiquement à<br />

37°C. A partir <strong>de</strong> DO600nm= 0,65, la culture est centrifugée à 6.000 g pendant 10 min à 4°C<br />

puis le culot est resuspendu dans 500 mL d’eau MilliQ stérile à 4°C. Le lavage est répété une<br />

fois. Puis les celllules sont resuspendues dans 1,5 mL <strong>de</strong> PEG 1500 (300 g.L -1 ).<br />

Electroporation <strong>de</strong> L. plantarum<br />

Cent µL <strong>de</strong> cellules compétentes sont électroporées en présence <strong>de</strong> 1 µg <strong>de</strong> plasmi<strong>de</strong>.<br />

Les paramètres électriques sont les suivants : 2200 V, 100Ω, 25 µF. Après le pulse, les<br />

cellules sont conservées 20 min dans la glace, puis 500 µL <strong>de</strong> MRS sont ajoutés. Après<br />

incubation à 37°C pendant 3h, une partie <strong>de</strong>s cellules (10 à 100 µL) est étalée sur milieu<br />

sélectif contenant du chloramphénicol à 10 µg. µL -1 .<br />

Outre les trois vecteurs d’étu<strong>de</strong> contenant les gènes mleP, maeP et yaeP <strong>de</strong> O. oeni, le<br />

vecteur pNZ8048 dans lequel a été cloné le gène mleP <strong>de</strong> L. lactis est également introduit<br />

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