THESE Maryse Bonnin Jusserand - Université de Bourgogne
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A. L’histamine dans la résistance au stress aci<strong>de</strong> chez O. oeni<br />
Résultats<br />
1) Clonage <strong>de</strong> l’histidine décarboxylase hdcA et <strong>de</strong> la perméase<br />
associée hdcP <strong>de</strong> Lactobacillus hilgardii 0006 chez O. oeni<br />
ATCC BAA-1163.<br />
Au commencement <strong>de</strong> ma thèse, la souchotèque du laboratoire ne contenait pas <strong>de</strong><br />
bactéries lactiques productrices d’amines biogènes. Sachant que les gènes <strong>de</strong> ces voies<br />
métaboliques sont instables et transmis par transfert horizontal, le criblage <strong>de</strong> souches, en<br />
condition aci<strong>de</strong> et en présence d’aci<strong>de</strong>s aminés précurseurs, est nécessaire à l’isolement <strong>de</strong>s<br />
bactéries productrices. En partenariat avec l’<strong>Université</strong> <strong>de</strong> Bor<strong>de</strong>aux 2, impliquée dans le<br />
projet européen, nous avons acquis la souche L. hilgardii 0006 (Lucas et al, 2005) productrice<br />
d’histamine et dont le transporteur a été caractérisé. Cette souche a donc été utilisée pour le<br />
clonage dans le pGID052 du locus portant les gènes codant l’histidine décarboxylase et la<br />
perméase associée (Figure 23). Ce vecteur recombinant a été transféré dans la souche O. oeni<br />
ATCC BAA-1163, déficiente pour la synthèse d’amines biogènes. Maintenu au-<strong>de</strong>là <strong>de</strong> cent<br />
générations sur milieu non-sélectif (Beltramo, 2004), le pGID052 est un vecteur stable chez<br />
O. oeni. Le clonage du locus hdc placé sous contrôle <strong>de</strong> son propre promoteur permet donc <strong>de</strong><br />
stabiliser le phénotype, afin d’étudier l’implication <strong>de</strong> ces gènes dans la survie <strong>de</strong> la souche au<br />
stress aci<strong>de</strong>. Deux constructions ont été réalisées : d’une part, le clonage <strong>de</strong>s gènes hdcA et<br />
hdcB, le gène codant l’enzyme nécessaire à la maturation <strong>de</strong> HdcA (Trip et al, 2011) ; et<br />
d’autre part, le clonage <strong>de</strong>s gènes hdcA, hdcB et hdcP codant le transporteur. Les vecteurs<br />
ainsi créés, nommés pGID052-hdcAB et pGID052-hdcPAB (Figure 24) ont été transférés<br />
avec succès dans la souche O. oeni ATCC BAA-1163.<br />
Figure 23. Organisation génétique <strong>de</strong> la voie <strong>de</strong> biosynthèse <strong>de</strong> l’histamine. Les gènes<br />
hdcP, hdcA et hdcB ont été clonés dans le pGID052 chez O. oeni. Le gène hisRS co<strong>de</strong><br />
pour une histidyl-tRNA synthétase<br />
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