THESE Maryse Bonnin Jusserand - Université de Bourgogne
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Synthèse bibliographique<br />
phosphate, un co-facteur enzymatique nécessaire au fonctionnement <strong>de</strong> la plupart <strong>de</strong>s<br />
décarboxylases (ormis pour l’histidine décarboxylase <strong>de</strong>s bactéries lactiques, dont le co-<br />
facteur est le pyruvoyl), et ont diminué la concentration en glucose. Ceci permet d’augmenter<br />
l’activité décarboxylase (Moreno-Arribas et al, 2003 ; Lan<strong>de</strong>te et al, 2007a). En effet, la<br />
fermentation du glucose par les bactéries lactiques diminue le pH, et masque l’alcalinisation<br />
liée à la production d’amines biogènes (Maijala, 1993). Des milieux spécifiques permettant <strong>de</strong><br />
détecter la production d'amines biogènes données ont ensuite été développés, comme le<br />
milieu TPM (Tyramine Production Medium), conçu pour la détection <strong>de</strong>s bactéries<br />
productrices <strong>de</strong> tyramine (Lan<strong>de</strong>te et al, 2007a), ou encore un milieu contenant du bleu <strong>de</strong><br />
bromothymol pour les bactéries HFB (histamine-forming bacteria) (Tao et al, 2009). De<br />
même, Bjornsdottir et al (2009) utilisent le milieu agar Niven (Niven’s agar method) pour<br />
détecter les bactéries à Gram négatif productrices d’histamine dans le poisson. Néanmoins,<br />
l’utilisation <strong>de</strong> ces métho<strong>de</strong>s n’est pas complètement fiable. En effet, les bactéries lactiques<br />
peuvent former d’autres produits alcalins ou <strong>de</strong> l’aci<strong>de</strong> dus à leur activité fermentaire, ce qui<br />
fausse les résultats. Des faux positifs (38%) ont également été obtenus sur <strong>de</strong>s bactéries à<br />
Gram négatif (Bjornsdottir et al, 2009). Aussi, les bactéries faiblement productrices ne sont<br />
pas détectables sur <strong>de</strong> tels milieux (Rosi et al, 2008), le changement <strong>de</strong> couleur <strong>de</strong> l’indicateur<br />
n’étant effectif que pour une production supérieure à 100 mg.L -1 (Lan<strong>de</strong>te et al, 2005).<br />
2) Métho<strong>de</strong>s <strong>de</strong> biologie moléculaire<br />
Les métho<strong>de</strong>s moléculaires, plus rapi<strong>de</strong>s et plus spécifiques, que les métho<strong>de</strong>s<br />
phénotypiques décrites précé<strong>de</strong>mment, permettent <strong>de</strong> détecter facilement la présence du ou<br />
<strong>de</strong>s gène(s) impliqué(s) dans la synthèse d’amines biogènes. Parmi ces techniques : la PCR,<br />
la PCR multiplexe, la PCR quantitative (qPCR) et la Reverse-Transcriptase quantitative PCR<br />
(qRT-PCR), ont été développées. Ces techniques ont différents <strong>de</strong>grés <strong>de</strong> performance et<br />
quelques variances dans leurs finalités.<br />
La PCR cible un gène particulier d’une espèce ou d’un genre. A ce sujet, <strong>de</strong>s amorces<br />
dites dégénérées peuvent être employées. Puis, le séquençage <strong>de</strong> l’amplicon permet <strong>de</strong> vali<strong>de</strong>r<br />
l’i<strong>de</strong>ntification. De nombreux couples d’amorces ciblant les gènes codant les décarboxylases<br />
ont été <strong>de</strong>ssinés (Lan<strong>de</strong>te et al, 2007b). A titre d’exemple, les bactéries lactiques du vin<br />
productrices d’histamine peuvent être détectées par PCR en utilisant le couple CL1/ JV17 (Le<br />
Jeune et al, 1995).<br />
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