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THESE Maryse Bonnin Jusserand - Université de Bourgogne

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Matériels et métho<strong>de</strong>s<br />

(BioRad), à l’ai<strong>de</strong> d’un électroporateur Gene Pulser Xcell BioRad selon les paramètres<br />

suivants : 2,5kV, 200Ω et 25µF. Après avoir administré la décharge électrique, 1mL <strong>de</strong> milieu<br />

LB est ajouté aux cellules puis la suspension cellulaire est incubée 1h à 37°C sous agitation<br />

avant d’être étalée sur milieu sélectif gélosé.<br />

B. Bacilus subtilis compétentes<br />

Dix mL <strong>de</strong> milieu LB sont ensemencés à DO600nm= 0.2 et incubés à 37°C. A<br />

DO600nm=1 ; 500 µL <strong>de</strong> pré-culture sont dilués dans 10 mL <strong>de</strong> MD medium composé <strong>de</strong> : 9,2<br />

mL <strong>de</strong> MN1X (KH2PO4 44 mmol, K2HPO4 60 mmol et citrate trisodium 3,8 mmol), 0,4 mL<br />

<strong>de</strong> glucose 50%, 0,5 mg <strong>de</strong> L-tryptophane, 0,1 mg <strong>de</strong> citrate d’ammonium ferrique et 0,03<br />

mmol <strong>de</strong> MgSO4. Après 4H d’incubation à 37°C, la culture est centrifugée 10 min à 5000<br />

rpm. 1,2 mL <strong>de</strong> surnageant est prélevé et mélangé à 0,3 mL <strong>de</strong> glycérol 85%. Le culot est<br />

resuspendu dans 1 mL <strong>de</strong> cette solution contenant le surnageant glycerolé, puis les cellules<br />

sont réparties en fractions aliquotes <strong>de</strong> 100 µL et congelées à -80°C.<br />

Pour la transformation, les cellules sont resuspendues dans 900 µl <strong>de</strong> MD medium. Deux cent<br />

cinquante µL sont mise en présence d’ADN (1 µg) puis incubée à 37°C pendant 30 min.<br />

Après ajout <strong>de</strong> 100 µL <strong>de</strong> LB, une secon<strong>de</strong> incubation <strong>de</strong> 45 min à 37°C a lieu avant d’étaler<br />

20 à 200 µL sur milieu sélectif gélosé.<br />

C. Oenococcus oeni électrocompétentes<br />

O. oeni est ensemencé en milieu FT80 ou en LAC à une DO600nm = 0,025 à 0,05. Les<br />

cellules sont récoltées à DO600nm =0,2, centrifugées et lavées trois fois en tampon contenant<br />

0,5M <strong>de</strong> saccharose et 10% <strong>de</strong> glycérol à température ambiante. Le culot cellulaire est ensuite<br />

repris dans 100 µL <strong>de</strong> tampon d’électroporation à pH 6,5 (Variot, 2010), composé <strong>de</strong> 5 mM<br />

<strong>de</strong> KH2PO4, 0,2 mM <strong>de</strong> MgCl2, 10% <strong>de</strong> glycérol et 15% d’éthanol absolu. Après ajout <strong>de</strong> 1µg<br />

d’ADN, les cellules sont électroporées selon les paramètres suivants : 2,4 kV, 200 Ω, 25 µF.<br />

Immédiatement après le choc électrique, 1 mL <strong>de</strong> milieu FT80 ou LAC contenant 0,5 M <strong>de</strong><br />

saccharose est ajouté. Après 4 h d’incubation à 28°C, les cellules sont étalées sur milieu<br />

sélectifs gélosé (10 µg.mL -1 d’érythromycine, 10 µg.mL -1 <strong>de</strong> lincomycine et 10 µg.mL -1 <strong>de</strong><br />

vancomycine). Les transformants apparaissent après 10 jours d’incubation. Pour éviter les<br />

contaminations, notamment par les moisissures, du Delvocid (Humeau, France), composé <strong>de</strong><br />

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