THESE Maryse Bonnin Jusserand - Université de Bourgogne
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Matériels et métho<strong>de</strong>s<br />
sur la colonne, le débit est réglé à 0,5 mL.min -1 . La colonne est lavée avec 20 mL <strong>de</strong> tampon<br />
NaH2PO4 (au moins 10 volumes <strong>de</strong> colonne) contenant 20 mM d’imidazole (le débit peut être<br />
augmenté à 1 mL.min -1 ). L’enzyme est éluée par palier en augmentant la concentration en<br />
imidazole, <strong>de</strong> 50 mM à 150 mM. On obtient ainsi différentes fractions d’élutions. Elles sont<br />
ensuite déposées sur gel SDS-PAGE pour évaluer leur pureté. Les fractions contenant<br />
l’enzyme sont regroupées et un dosage <strong>de</strong> Bradford est effectué pour déterminer la<br />
concentration protéique <strong>de</strong> l’extrait purifié. L’enzyme est conservée en solution glycérol 30%<br />
à -20°C en fractions aliquotes <strong>de</strong> 500 µL.<br />
A. Gel SDS-PAGE<br />
Préparation du gel <strong>de</strong> séparation à 10% d’acrylami<strong>de</strong><br />
Pour 10 mL (nécessaire à la préparation <strong>de</strong> 2 gels <strong>de</strong> 8,5 cm x 7 cm, les réactifs sont les<br />
suivants : 4,1 mL d’eau MilliQ, 3,3 mL d’acrylami<strong>de</strong>/bis acrylami<strong>de</strong> 30:0,8 (40%, v/v)<br />
(BioRad), 2,5 mL <strong>de</strong> tampon 4X, pH 8,8 (composé <strong>de</strong> 181, 71 g.L -1 <strong>de</strong> Tris-HCl), 100 µL <strong>de</strong><br />
SDS 10%, 100 µL d’APS (persulfate d’ammonium) 10% et 4,5 µL <strong>de</strong> TEMED (N-N-N-<br />
tétraméthyl éthylènediamine).<br />
Préparation du gel <strong>de</strong> concentration à 10% d’acrylami<strong>de</strong><br />
Pour 5 mL (2 gels), sont mélangés : 3,6 mL d’eau MilliQ, 708 µL d’acrylami<strong>de</strong> /bis<br />
acrylami<strong>de</strong> 30:0,8 (40%, v/v), 625 µL <strong>de</strong> tampon 8X, pH 6,8 (composé <strong>de</strong> 121,14 g.L -1 <strong>de</strong><br />
Tris-HCl), 50 µL <strong>de</strong> SDS 10%, 50 µL d’APS 10% et 5 µL <strong>de</strong> TEMED.<br />
Dépôt <strong>de</strong>s échantillons<br />
10 µg <strong>de</strong> protéines additionnées <strong>de</strong> tampon <strong>de</strong> charge (1X final) sont déposés par puits, après<br />
dénaturation <strong>de</strong>s échantillons 5 min à 95°C. Le tampon <strong>de</strong> charge 4X est composé <strong>de</strong> : 3,2 mL<br />
<strong>de</strong> SDS à 25%, 3,3 mL <strong>de</strong> glycérol à 100%, 0,8 mL <strong>de</strong> bleu <strong>de</strong> bromophénol à 0,5% (p/v), 200<br />
µL <strong>de</strong> DTT à 100 mM et 2,5 mL <strong>de</strong> Tris 1M.<br />
Migration <strong>de</strong>s échantillons<br />
Les échantillons migrent dans une cuve d’électrophorèse soumis à 200V pendant environ 1h,<br />
dans du tampon d’électrophorèse 1X, préparé à partir <strong>de</strong> tampon 10 X constitué <strong>de</strong> : 30,2 g.L -1<br />
<strong>de</strong> Tris base, 188 g.L -1 <strong>de</strong> glycine et 10 g.L -1 <strong>de</strong> SDS.<br />
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