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THESE Maryse Bonnin Jusserand - Université de Bourgogne

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Espèce Souche Marqueurs d'intérêt, propriétés Source<br />

E. coli EC101 gène repA du pWV01 intégré au chromosome Law et al, 1995<br />

B. subtilis 168 Néant souche du laboratoire<br />

Matériels et métho<strong>de</strong>s<br />

O. oeni ATCC BAA-1163 Néant souche du laboratoire<br />

O. oeni BR14/97 productrice <strong>de</strong> putrescine et <strong>de</strong> cadavérine Guerrini et al, 2002<br />

L. hilgardii 0006 productrice d'histamine Lucas et al, 2005<br />

MATERIELS ET METHODES<br />

Chapitre I : clonages et métho<strong>de</strong>s analytiques<br />

I. Souches bactériennes utilisées et milieux <strong>de</strong> culture<br />

E. coli et B. subtilis sont cultivés en milieu Luria Broth (LB) (Bertani, 1951) à 37°C<br />

sous agitation. Le milieu LB est composé <strong>de</strong> : 10 g.L -1 <strong>de</strong> bacto-tryptone, 5 g.L -1 d’extrait <strong>de</strong><br />

levure et <strong>de</strong> 10 g.L -1 <strong>de</strong> NaCl à pH 7.<br />

O. oeni est cultivé en milieu FT80 (Cavin et al, 1989) dont la composition est la<br />

suivante : 5 g.L -1 d’extrait <strong>de</strong> vian<strong>de</strong>, 5 g.L -1 d’extrait <strong>de</strong> levure, 5 g.L -1 <strong>de</strong> glucose, 3,5 g.L -1<br />

<strong>de</strong> fructose, 10 g.L -1 d’aci<strong>de</strong> D,L-malique, 0,6 g.L -1 KH2PO4, 0,45 g.L -1 KCl, 0,13 g.L -1<br />

CaCl2, 2H2O, 3 mg.L -1 MnSO4, H2O, 0,13 g.L -1 MgSO4, 7H2O et 1 mL.L -1 <strong>de</strong> tween 80 ; ou<br />

en milieu LAC composé <strong>de</strong> 78 mL.L -1 <strong>de</strong> jus <strong>de</strong> raisin blanc, 33 g.L -1 d’extrait <strong>de</strong> levures, 0,6<br />

mL.L -1 <strong>de</strong> tween 80, 80 mg.L -1 MnSO4, H2O à 28/30°C, en culture statique.<br />

Lactobacillus hilgardii est cultivé en milieu CarrM (Lucas et al, 2005) composé <strong>de</strong> : 4<br />

g.L -1 <strong>de</strong> casamino acids, 3 g.L -1 d’extrait <strong>de</strong> levures, 5 g.L -1 <strong>de</strong> glucose , 10 g.L -1 <strong>de</strong> D,L-<br />

malate, 0,44 g.L -1 KH2PO4, 0,34 g.L -1 KCl, 0,1 g.L -1 CaCl2, 0,002 g.L -1 MnSO4, 0,1 g.L -1<br />

MgSO4 et 2 g.L -1 d’histidine à pH 4,8 pour maintenir une pression <strong>de</strong> sélection afin <strong>de</strong> ne pas<br />

perdre le plasmi<strong>de</strong> pHDC (Lucas et al, 2005) contenant entre autres les gènes codant<br />

l’histidine décarboxylase et l’antiport histidine/histamine.<br />

Tableau 4. Souches bactériennes utilisées.<br />

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