24.10.2014 Views

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

SHOW MORE
SHOW LESS

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

OZNACZANIE WRAŻLIWOŚCI NA ANTYBIOTYKI<br />

Tabela 24. Strefy zahamowania wzrostu dla szczepów kontrolnych a<br />

a<br />

b<br />

c<br />

Antybiotyk<br />

Zawartość<br />

w kra˛żku<br />

Średnica strefy zahamowania (mm)<br />

S. aureus<br />

(ATCC 25923)<br />

E. coli<br />

(ATCC 25922)<br />

P. aeruginosa<br />

(ATCC 27853)<br />

Amikacyna 30 µg 20–26 19 –26 18 –26<br />

Amoksycylina/kwas 20/10 µg 28–36 19 –25 —<br />

klawulanowy b<br />

Ampicylina 10 µg 27–35 16 –22 —<br />

Benzylopenicylina 10 µg 26–37 — —<br />

Cefalotyna 30 µg 29–37 15 –21 —<br />

Cefalozyna 30 µg 29–35 23 –29 —<br />

Ceftazydym 30 µg 16–20 25 –32 22 –29<br />

Cefotaksym 30 µg 25–31 29 –35 18 –22<br />

Ceftriakson 30 µg 22–28 29 –35 17 –23<br />

Cefuroksym 30 µg 27–35 20 –26 —<br />

Chl<strong>or</strong>amfenikol 30 µg 19–26 21 –27 —<br />

Ciprofloksacyna 5 µg 22–30 30 –40 25 –33<br />

Klindamycyna 2 µg 24–30 — —<br />

Kotrimoksazol 25 µg 24–32 24 –32 —<br />

Erytromycyna 15 µg 22–30 — —<br />

Gentamycyna 10 µg 19–27 19 –26 16 –21<br />

Kwas nalidyksowy 30 µg — 22 –28 —<br />

Nitrofurantoina 300 µg 18–22 20 –25 —<br />

N<strong>or</strong>floksacyna 10 µg 17–28 28 –35 22 –29<br />

Oksacylina 1 µg 18–24 — —<br />

Piperacylina 100 µg — 24 –30 25 –33<br />

Sulfonamid c 300 µg 24–34 15 –23 —<br />

Tetracyklina 30 µg 24–30 18 –25 —<br />

Tobramycyna 10 µg 19–29 18 –26 19 –25<br />

Trimetoprim 5 µg 19–26 21 –28 —<br />

Wankomycyna 30 µg 17–21 — —<br />

National Committee f<strong>or</strong> Clinical Lab<strong>or</strong>at<strong>or</strong>y Standards. Perf<strong>or</strong>mance standards f<strong>or</strong> antimicrobial<br />

disc susceptibility tests. 6 th ed. Vol. 21 No 1 (M2-A7 i M7-A5) i 11 th inf<strong>or</strong>mational<br />

supplement 2001 (M100-S11).<br />

Amoksycylina z kwasem klawulanowym (inhibit<strong>or</strong> β-laktamaz).<br />

Sulfizoksazol.<br />

Odczynniki<br />

Agar Mueller-Hintona<br />

1. Przygotować agar Mueller-Hintona z postaci sproszkowanej, zgodnie z zaleceniem<br />

producenta. Podłoża powinny być przygotowane w sposób, który<br />

umożliwi uzyskanie odpowiednich stref zahamowania dla szczepów kontrolnych<br />

(patrz tabela 24). Ważne jest, aby nie przegrzać podłoża.<br />

2. Schłodzić podłożedo45– 50°C i rozlać na płytki. Wypełnić do poziomu około<br />

4 mm. Płytka o średnicy 9 cm zawiera około 25 ml podłoża.<br />

3. Gdy agar stężeje, płytki do natychmiastowego użycia suszyć przez 10 – 30 minut<br />

w35°C, umieszczając jewcieplarcedogóry dnem, z uchylonymi wieczkami.<br />

4. Nie wyk<strong>or</strong>zystane płytki można przechowywać wchłodziarce, w szczelnie<br />

zamkniętych plastikowych w<strong>or</strong>eczkach. Płytki mogą być przechowywane<br />

w ten sposób przez 2 tygodnie.<br />

W celu uzyskania wiarygodnych stref zahamowania wzrostu, do badania lekowrażliwości<br />

na sulfonamidy i kotrimoksazol należy użyć agaru Mueller-Hintona,<br />

zawierającego niskie stężenia inhibit<strong>or</strong>ów tymidyny i tyminy. Z tego względu<br />

każda nowa partia agaru Mueller-Hintona musi zostać przetestowana z użyciem<br />

126

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!