Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
You also want an ePaper? Increase the reach of your titles
YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.
CZE˛ŚĆ I<br />
11. Wymieszać ichłodzić w4°C przez dwie godziny, umożliwiając przebieg<br />
reakcji antygen-przeciwciało.<br />
12. Do wszystkich probówek, włączając kontrolne probówki 7. i 8., dodać 0,5 ml<br />
8% zawiesiny erytrocytów, wymieszać i inkubować w łaźni wodnej w 37°C<br />
przez 30 minut.<br />
13. Odwirować probówki w 1000 g przez 2 minuty i obserwować hemolizę.<br />
W kontrolnej probówce 7. nie powinna zachodzić hemoliza, w kontrolnej<br />
probówce 8. powinna zajść całkowita hemoliza.<br />
14. Miano ASO to najwyższe rozcieńczenie nie wykazujące hemolizy:<br />
• Jeśli we wszystkich probówkach zachodzi hemoliza, wynik opisać ,,miano<br />
ASO poniżej 200 IU’’.<br />
• Jeśli w probówkach o wyższym rozcieńczeniu nie zachodzi hemoliza,<br />
zanotować wynik ,,ASO dodatnie z mianem’’.<br />
Wykrywanie antygenów bakteryjnych<br />
Lateksowy test aglutynacji i test koaglutynacji, wykrywające antygeny bakteryjne,<br />
stosowane są do identyfikacji mikro<strong>or</strong>ganizmów i ich antygenów w hodowlach<br />
lub w próbkach klinicznych. W teście aglutynacji lateksowej<br />
cząsteczki polimerów wyk<strong>or</strong>zystuje się jako nośnik fazy stałej; w teście<br />
koaglutynacji nośnikiem fazy stałej są erytrocyty. Za pomocą testu lateksowego<br />
można wykryć antygeny polisacharydowe bakterii wywołujących zapalenie opon<br />
mózgowo-rdzeniowych, w tym Haemophilus influenzae (tyb b), S. pneumoniae<br />
(omniwalentny), N. meningitidis (grupa A, B, C, Y i W135), E. coli (typ K1)<br />
i S. agalactiae (grupa B). Testy aglutynacji lateksowej są przydatne do<br />
identyfikacji paci<strong>or</strong>kowców z grup Lancefield A, B, C, D, F i G. Odczyny<br />
lateksowe można wyk<strong>or</strong>zystać w jakościowym teście aglutynacji szkiełkowej<br />
i w ilościowym teście aglutynacji probówkowej <strong>or</strong>az w typowaniu grup<br />
Streptococcus A-D, N. meningitidis, H. influenzae, Salmonella, Shigella, Vibrio<br />
cholerae itp.<br />
Do wykrycia antygenów polisacharydowych w próbkach klinicznych niezbędny<br />
jest progowy poziom antygenu. Jeśli w preparacie barwionym metodą Grama<br />
widoczne są drobnoustroje, zwykle, choć nie w każdym przypadku, przekroczony<br />
jest poziom progowy. W płynie mózgowo-rdzeniowym pacjentów z zakażeniem<br />
N. meningitidis wykrywana jest znacznie mniejsza liczba bakterii niż w zakażeniach<br />
wywołanych innymi typami Neisseria spp., dlatego rzadziej osiągany jest<br />
progowy poziom antygenów polisacharydowych.<br />
Kilka serogrup N. meningitidis może wywoływać zapalenie opon mózgowo-<br />
-rdzeniowych. Serogrupy A, C, Y i W135 mają stabilny antygen, który można<br />
wykazać za pomocą pojedynczego poliwalentnego odczynnika, podczas gdy<br />
antygen grupy B jest stosunkowo niestabilny i w związku z tym trudniej<br />
wykrywalny. Nie można go zróżnicować z polisacharydowym antygenem K1<br />
E. coli, która wśród E. coli jest głównym czynnikiem wywołującym zapalenie<br />
opon mózgowo-rdzeniowych u now<strong>or</strong>odków. Wykazanie w preparatach barwionych<br />
metodą Grama obecności Gram-ujemnych dwoinek sugeruje N. meningitidis<br />
grupy B, obecność Gram-ujemnych pałeczek wskazuje na E. coli.<br />
W niektórych testach, polisacharydowe antygeny z drobnoustrojów uzyskiwane<br />
są przed badaniem. Pozyskiwanie antygenów przeprowadza się chemicznie lub<br />
enzymatycznie.<br />
155