24.10.2014 Views

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

SHOW MORE
SHOW LESS

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

CZE˛ŚĆ I<br />

11. Wymieszać ichłodzić w4°C przez dwie godziny, umożliwiając przebieg<br />

reakcji antygen-przeciwciało.<br />

12. Do wszystkich probówek, włączając kontrolne probówki 7. i 8., dodać 0,5 ml<br />

8% zawiesiny erytrocytów, wymieszać i inkubować w łaźni wodnej w 37°C<br />

przez 30 minut.<br />

13. Odwirować probówki w 1000 g przez 2 minuty i obserwować hemolizę.<br />

W kontrolnej probówce 7. nie powinna zachodzić hemoliza, w kontrolnej<br />

probówce 8. powinna zajść całkowita hemoliza.<br />

14. Miano ASO to najwyższe rozcieńczenie nie wykazujące hemolizy:<br />

• Jeśli we wszystkich probówkach zachodzi hemoliza, wynik opisać ,,miano<br />

ASO poniżej 200 IU’’.<br />

• Jeśli w probówkach o wyższym rozcieńczeniu nie zachodzi hemoliza,<br />

zanotować wynik ,,ASO dodatnie z mianem’’.<br />

Wykrywanie antygenów bakteryjnych<br />

Lateksowy test aglutynacji i test koaglutynacji, wykrywające antygeny bakteryjne,<br />

stosowane są do identyfikacji mikro<strong>or</strong>ganizmów i ich antygenów w hodowlach<br />

lub w próbkach klinicznych. W teście aglutynacji lateksowej<br />

cząsteczki polimerów wyk<strong>or</strong>zystuje się jako nośnik fazy stałej; w teście<br />

koaglutynacji nośnikiem fazy stałej są erytrocyty. Za pomocą testu lateksowego<br />

można wykryć antygeny polisacharydowe bakterii wywołujących zapalenie opon<br />

mózgowo-rdzeniowych, w tym Haemophilus influenzae (tyb b), S. pneumoniae<br />

(omniwalentny), N. meningitidis (grupa A, B, C, Y i W135), E. coli (typ K1)<br />

i S. agalactiae (grupa B). Testy aglutynacji lateksowej są przydatne do<br />

identyfikacji paci<strong>or</strong>kowców z grup Lancefield A, B, C, D, F i G. Odczyny<br />

lateksowe można wyk<strong>or</strong>zystać w jakościowym teście aglutynacji szkiełkowej<br />

i w ilościowym teście aglutynacji probówkowej <strong>or</strong>az w typowaniu grup<br />

Streptococcus A-D, N. meningitidis, H. influenzae, Salmonella, Shigella, Vibrio<br />

cholerae itp.<br />

Do wykrycia antygenów polisacharydowych w próbkach klinicznych niezbędny<br />

jest progowy poziom antygenu. Jeśli w preparacie barwionym metodą Grama<br />

widoczne są drobnoustroje, zwykle, choć nie w każdym przypadku, przekroczony<br />

jest poziom progowy. W płynie mózgowo-rdzeniowym pacjentów z zakażeniem<br />

N. meningitidis wykrywana jest znacznie mniejsza liczba bakterii niż w zakażeniach<br />

wywołanych innymi typami Neisseria spp., dlatego rzadziej osiągany jest<br />

progowy poziom antygenów polisacharydowych.<br />

Kilka serogrup N. meningitidis może wywoływać zapalenie opon mózgowo-<br />

-rdzeniowych. Serogrupy A, C, Y i W135 mają stabilny antygen, który można<br />

wykazać za pomocą pojedynczego poliwalentnego odczynnika, podczas gdy<br />

antygen grupy B jest stosunkowo niestabilny i w związku z tym trudniej<br />

wykrywalny. Nie można go zróżnicować z polisacharydowym antygenem K1<br />

E. coli, która wśród E. coli jest głównym czynnikiem wywołującym zapalenie<br />

opon mózgowo-rdzeniowych u now<strong>or</strong>odków. Wykazanie w preparatach barwionych<br />

metodą Grama obecności Gram-ujemnych dwoinek sugeruje N. meningitidis<br />

grupy B, obecność Gram-ujemnych pałeczek wskazuje na E. coli.<br />

W niektórych testach, polisacharydowe antygeny z drobnoustrojów uzyskiwane<br />

są przed badaniem. Pozyskiwanie antygenów przeprowadza się chemicznie lub<br />

enzymatycznie.<br />

155

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!