24.10.2014 Views

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

SHOW MORE
SHOW LESS

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

KAŁ<br />

Procedura identyfikacji antygenu H<br />

Wstępna identyfikacja antygenu rzęskowego H może być przeprowadzona<br />

w teście bezpośredniej aglutynacji, jak opisano powyżej dla antygenu somatycznego<br />

O. Niekiedy konieczne jest zwiększenie ekspresji ruchu badanych szczepów<br />

przez kilkakrotne kolejne przesiewy na półpłynne podłoża odżywcze (,,swarm<br />

agar’’, patrz niżej). Surowice odp<strong>or</strong>nościowe do wykonania testu z tymi<br />

antygenami są dostępne komercyjnie. Mimo to, jeśli identyfikacja obu faz<br />

rzęskowych jest niezbędna do klasyfikacji, wymagana jest faza zahamowania.<br />

Często konieczna jest także inwersja faz z użyciem przeznaczonych do tego celu<br />

surowic 1 .<br />

1. Przygotować półpłynne podłoża odżywcze zawierające 0,2 – 0,4% agaru.<br />

Umieścić po 1 ml podłoża w probówkach.<br />

2. Zastąpić k<strong>or</strong>ki probówek k<strong>or</strong>kami z waty.<br />

3. Upłynnić agar w gotującej się wodzie i umieścić probówki z płynnym agarem<br />

w łaźni wodnej w temperaturze 45°C na 30 minut.<br />

4. Opisać każdą probówkę numerem próbki i surowicy anty-H (H:b, H:i i H:1,2).<br />

Również probówkę kontrolną.<br />

5. Dodać 10 µl heterogennej surowicy H każdej fazy inwersji do odpowiednich<br />

agarów, delikatnie wstrząsnąć probówki i pozostawić agar do skrzepnięcia<br />

w skosie.<br />

6. Sp<strong>or</strong>ządzić gęstą zawiesinę izolowanych kolonii w roztw<strong>or</strong>ze fizjologicznym<br />

soli, posiać ezą, nakłuwając skos, i inkubować przez noc.<br />

7. Z hodowli uzyskanej na skosie pobrać ezą materiał i rozprowadzić równomiernie<br />

w kropli roztw<strong>or</strong>u fizjologicznego soli.<br />

8. Ezą o objętości 10 µl pobrać kroplę jednej z heterogennych surowic<br />

odp<strong>or</strong>nościowych H i umieścić ją na szkiełku, tuż obok zawiesiny<br />

bakterii.<br />

9. Wymieszać surowicę z zawiesiną bakterii, przechylając szkiełko do przodu<br />

idotyłu przez 1 minutę. Obserwować tw<strong>or</strong>zenie się grudek, oglądając<br />

szkiełko w dobrym świetle. Pojawienie się w tym czasie wyraźnych grudek<br />

świadczy o dodatnim wyniku.<br />

10. Jeśli to konieczne, należy powtórzyć test aglutynacji z innymi heterogennymi<br />

surowicami i zidentyfikować serotyp, wyk<strong>or</strong>zystując schemat przedstawiony<br />

na str. 69.<br />

Salmonella typhi<br />

Dla potwierdzenia identyfikacji biochemicznej należy przeprowadzić testy<br />

z surowicami odp<strong>or</strong>nościowymi Vi, O grupy D (O:D) i H:d. Z powodu obecności<br />

antygenu Vi hodowle aglutynujące w surowicy Vi mogą nie aglutynować<br />

w surowicy O:D. Należy usunąć antygen Vi, podgrzewając zawiesinę w temperaturze<br />

100°C przez 20 minut, i powtórnie przeprowadzić test z surowicą O:D.<br />

Po uzyskaniu aglutynacji w surowicach Vi, O:D i H:d zanotować: ,,Salmonella<br />

typhi’’. Jeśli wynik jest dodatni jedynie w surowicy O:D, zanotować:,,Salmonella,<br />

grupa D’’.<br />

1<br />

Dostępne w Statens Serum Institut, 5 Artillerivej, 2300 Copenhagen S, Denmark.<br />

70

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!