Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
You also want an ePaper? Increase the reach of your titles
YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.
KAŁ<br />
Procedura identyfikacji antygenu H<br />
Wstępna identyfikacja antygenu rzęskowego H może być przeprowadzona<br />
w teście bezpośredniej aglutynacji, jak opisano powyżej dla antygenu somatycznego<br />
O. Niekiedy konieczne jest zwiększenie ekspresji ruchu badanych szczepów<br />
przez kilkakrotne kolejne przesiewy na półpłynne podłoża odżywcze (,,swarm<br />
agar’’, patrz niżej). Surowice odp<strong>or</strong>nościowe do wykonania testu z tymi<br />
antygenami są dostępne komercyjnie. Mimo to, jeśli identyfikacja obu faz<br />
rzęskowych jest niezbędna do klasyfikacji, wymagana jest faza zahamowania.<br />
Często konieczna jest także inwersja faz z użyciem przeznaczonych do tego celu<br />
surowic 1 .<br />
1. Przygotować półpłynne podłoża odżywcze zawierające 0,2 – 0,4% agaru.<br />
Umieścić po 1 ml podłoża w probówkach.<br />
2. Zastąpić k<strong>or</strong>ki probówek k<strong>or</strong>kami z waty.<br />
3. Upłynnić agar w gotującej się wodzie i umieścić probówki z płynnym agarem<br />
w łaźni wodnej w temperaturze 45°C na 30 minut.<br />
4. Opisać każdą probówkę numerem próbki i surowicy anty-H (H:b, H:i i H:1,2).<br />
Również probówkę kontrolną.<br />
5. Dodać 10 µl heterogennej surowicy H każdej fazy inwersji do odpowiednich<br />
agarów, delikatnie wstrząsnąć probówki i pozostawić agar do skrzepnięcia<br />
w skosie.<br />
6. Sp<strong>or</strong>ządzić gęstą zawiesinę izolowanych kolonii w roztw<strong>or</strong>ze fizjologicznym<br />
soli, posiać ezą, nakłuwając skos, i inkubować przez noc.<br />
7. Z hodowli uzyskanej na skosie pobrać ezą materiał i rozprowadzić równomiernie<br />
w kropli roztw<strong>or</strong>u fizjologicznego soli.<br />
8. Ezą o objętości 10 µl pobrać kroplę jednej z heterogennych surowic<br />
odp<strong>or</strong>nościowych H i umieścić ją na szkiełku, tuż obok zawiesiny<br />
bakterii.<br />
9. Wymieszać surowicę z zawiesiną bakterii, przechylając szkiełko do przodu<br />
idotyłu przez 1 minutę. Obserwować tw<strong>or</strong>zenie się grudek, oglądając<br />
szkiełko w dobrym świetle. Pojawienie się w tym czasie wyraźnych grudek<br />
świadczy o dodatnim wyniku.<br />
10. Jeśli to konieczne, należy powtórzyć test aglutynacji z innymi heterogennymi<br />
surowicami i zidentyfikować serotyp, wyk<strong>or</strong>zystując schemat przedstawiony<br />
na str. 69.<br />
Salmonella typhi<br />
Dla potwierdzenia identyfikacji biochemicznej należy przeprowadzić testy<br />
z surowicami odp<strong>or</strong>nościowymi Vi, O grupy D (O:D) i H:d. Z powodu obecności<br />
antygenu Vi hodowle aglutynujące w surowicy Vi mogą nie aglutynować<br />
w surowicy O:D. Należy usunąć antygen Vi, podgrzewając zawiesinę w temperaturze<br />
100°C przez 20 minut, i powtórnie przeprowadzić test z surowicą O:D.<br />
Po uzyskaniu aglutynacji w surowicach Vi, O:D i H:d zanotować: ,,Salmonella<br />
typhi’’. Jeśli wynik jest dodatni jedynie w surowicy O:D, zanotować:,,Salmonella,<br />
grupa D’’.<br />
1<br />
Dostępne w Statens Serum Institut, 5 Artillerivej, 2300 Copenhagen S, Denmark.<br />
70