Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Create successful ePaper yourself
Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.
KAŁ<br />
Test hemaglutynacji pośredniej<br />
1. Przez wielokrotne odwirowanie przygotować w fizjologicznym roztw<strong>or</strong>ze soli<br />
2,5% zawiesinę kurzych lub bydlęcych krwinek czerwonych.<br />
2. Na szkiełku zaznaczyć ołówkiem kilka pól i ezą nanieść na każde z nich oczko<br />
(3 mm) zawiesiny krwinek czerwonych.<br />
3. W każdej z przygotowanych zawiesin krwinek umieścić niewielką liczbę<br />
bakterii pobranych z agaru lub skosu KIA, dobrze wymieszać.<br />
W przypadku szczepów biotypu El T<strong>or</strong>, aglutynacja pojawia się w ciągu<br />
30 – 60 sekund. Znane szczepy hemaglutynujące (El T<strong>or</strong>) i nie hemaglutynujące<br />
powinny być użyte jako kontrola dla każdej z nowo przygotowanych zawiesin<br />
krwinek. Świeżo izolowane szczepy klasycznych biotypów dają zwykle ujemny<br />
wynik testu, jednak w przypadku starych szczepów lab<strong>or</strong>at<strong>or</strong>yjnych wynik ten nie<br />
zawsze jest ujemny.<br />
Test wrażliwości na polimiksynę B<br />
1. Na podłożu Mueller-Hintona lub na agarze z wyciągiem mięsnym rozprowadzić<br />
oczko hodowli szczepów inkubowanej przez noc w wodzie<br />
peptonowej.<br />
2. Umieścić krążek zawierający 50 jednostek polimiksyny B w centrum hodowli.<br />
3. Umieścić płytkę wchłodziarce na 1 godzinę.<br />
4. Inkubować płytkę przez noc w temperaturze 36°C.<br />
Zidentyfikowane szczepy biotypu klasycznego i El T<strong>or</strong> powinny być zawsze<br />
włączane do grupy szczepów kontrolnych. Klasyczne szczepy są wrażliwe na<br />
polimiksynę B, dlatego zawsze obserwuje się wyraźną strefę zahamowania<br />
wzrostu wokół krążka. Szczepy El T<strong>or</strong> są niewrażliwe i strefa zahamowania nie<br />
jest widoczna.<br />
Campylobacter jejuni i Campylobacter coli<br />
W lab<strong>or</strong>at<strong>or</strong>iach klinicznych dostępnych jest tylko kilka testów do identyfikacji<br />
gatunków i podgatunków Campylobacter. Ze względu na temperaturę wzrostu<br />
Campylobacter spp. można podzielić na dwie grupy: gatunki ciepłolubne, które<br />
rosną w temperaturze 42 – 43°C, i gatunki nieciepłolubne, które rosną w temperaturze<br />
15 – 25°C.<br />
Do gatunków ciepłolubnych należą: Campylobacter jejuni podgatunek jejuni,<br />
C. coli, C. lari, C. upsaliensis i niektóre szczepy C. hyointestinalis. C. lari<br />
i C. hyointestinalis są op<strong>or</strong>ne, natomiast C. jejuni, C. coli i C. upsaliensis są<br />
wrażliwe na kwas nalidyksowy; C. jejuni podgatunek jejuni, C. coli, C. lari są<br />
op<strong>or</strong>ne, natomiast C. hyointestinalis i C. upsaliensis są wrażliwe na cefalotynę.<br />
Różnicowanie między tymi grupami odbywa się na podstawie zdolności do<br />
hydrolizy hipuranu i wytwarzania siarkowod<strong>or</strong>u na agarze Kliglera.<br />
Do gatunków nieciepłolubnych należą: C. jejuni podgatunek doylei, C. fetus<br />
i Arcobacter butzleri. C. jejuni podgatunek doylei nie rośnie w temperaturze 15°C<br />
ani w temperaturze 25°C; C. fetus rośnie dobrze w 25°C, ale nie rośnie w 15°C;<br />
A. butzleri rośnie w obydwu temperaturach. A. butzleri jest op<strong>or</strong>ny na cefalotynę,<br />
a C. jejuni podgatunek doylei i C. fetus są na nią wrażliwe (tabela 18).<br />
66