Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

More documents

Recommendations

Info

OZNACZANIE WRAŻLIWOŚCI NA ANTYBIOTYKI Tabela 24. Strefy zahamowania wzrostu dla szczepów kontrolnych a a b c Antybiotyk Zawartość w kra˛żku Średnica strefy zahamowania (mm) S. aureus (ATCC 25923) E. coli (ATCC 25922) P. aeruginosa (ATCC 27853) Amikacyna 30 µg 20–26 19 –26 18 –26 Amoksycylina/kwas 20/10 µg 28–36 19 –25 — klawulanowy b Ampicylina 10 µg 27–35 16 –22 — Benzylopenicylina 10 µg 26–37 — — Cefalotyna 30 µg 29–37 15 –21 — Cefalozyna 30 µg 29–35 23 –29 — Ceftazydym 30 µg 16–20 25 –32 22 –29 Cefotaksym 30 µg 25–31 29 –35 18 –22 Ceftriakson 30 µg 22–28 29 –35 17 –23 Cefuroksym 30 µg 27–35 20 –26 — Chloramfenikol 30 µg 19–26 21 –27 — Ciprofloksacyna 5 µg 22–30 30 –40 25 –33 Klindamycyna 2 µg 24–30 — — Kotrimoksazol 25 µg 24–32 24 –32 — Erytromycyna 15 µg 22–30 — — Gentamycyna 10 µg 19–27 19 –26 16 –21 Kwas nalidyksowy 30 µg — 22 –28 — Nitrofurantoina 300 µg 18–22 20 –25 — Norfloksacyna 10 µg 17–28 28 –35 22 –29 Oksacylina 1 µg 18–24 — — Piperacylina 100 µg — 24 –30 25 –33 Sulfonamid c 300 µg 24–34 15 –23 — Tetracyklina 30 µg 24–30 18 –25 — Tobramycyna 10 µg 19–29 18 –26 19 –25 Trimetoprim 5 µg 19–26 21 –28 — Wankomycyna 30 µg 17–21 — — National Committee for Clinical Laboratory Standards. Performance standards for antimicrobial disc susceptibility tests. 6 th ed. Vol. 21 No 1 (M2-A7 i M7-A5) i 11 th informational supplement 2001 (M100-S11). Amoksycylina z kwasem klawulanowym (inhibitor β-laktamaz). Sulfizoksazol. Odczynniki Agar Mueller-Hintona 1. Przygotować agar Mueller-Hintona z postaci sproszkowanej, zgodnie z zaleceniem producenta. Podłoża powinny być przygotowane w sposób, który umożliwi uzyskanie odpowiednich stref zahamowania dla szczepów kontrolnych (patrz tabela 24). Ważne jest, aby nie przegrzać podłoża. 2. Schłodzić podłożedo45– 50°C i rozlać na płytki. Wypełnić do poziomu około 4 mm. Płytka o średnicy 9 cm zawiera około 25 ml podłoża. 3. Gdy agar stężeje, płytki do natychmiastowego użycia suszyć przez 10 – 30 minut w35°C, umieszczając jewcieplarcedogóry dnem, z uchylonymi wieczkami. 4. Nie wykorzystane płytki można przechowywać wchłodziarce, w szczelnie zamkniętych plastikowych woreczkach. Płytki mogą być przechowywane w ten sposób przez 2 tygodnie. W celu uzyskania wiarygodnych stref zahamowania wzrostu, do badania lekowrażliwości na sulfonamidy i kotrimoksazol należy użyć agaru Mueller-Hintona, zawierającego niskie stężenia inhibitorów tymidyny i tyminy. Z tego względu każda nowa partia agaru Mueller-Hintona musi zostać przetestowana z użyciem 126
CZE˛ŚĆ I szczepu kontrolnego Enterococcus faecalis (ATCC 29212 lub 33186) oraz krążka z kotrimoksazolem. O odpowiedniej jakości podłoży świadczy wyraźna, 20- -milimetrowa lub większa, strefa zahamowania, co ważne — bez mglistego wzrostu i drobnych kolonii. Kra˛żki z antybiotykami Można używać wszystkich dostępnych komercyjnie krążków o właściwej średnicy i stężeniu leku. Zapasy krążków należy przechowywać w –20°C; odpowiednia jest także zamrażarka chłodziarki. Mały podręczny zestaw krążków można przechowywać wchłodziarce do miesiąca. Po wyjęciu z chłodziarki pojemniki należy pozostawić w temperaturze pokojowej na około 1 godziny (do wyrównania temperatur). Taka procedura zmniejsza skraplanie pary, pojawiającej się w wyniku kontaktu ciepłego powietrza z powierzchnią zimnego pojemnika. Jeśli używa się dyspensera krążków, należy przechowywać go w chłodziarce ze szczelnie domkniętą pokrywą. Przed otwarciem dyspenser również powinien zostać ogrzany do temperatury pokojowej. Wzorzec zmętnienia Przygotować wzorzec zmętnienia (gęstości zawiesiny — przyp. tłum.) wlewając 0,6 ml 1% (10 g/l) roztworu dwuwodzianu chlorku baru do 100-mililitrowego kalibrowanego cylindra i wypełnić do 100 ml 1% (10 ml/l) kwasem siarkowym. Roztwór wzorcowego zmętnienia należy umieścić w identycznej probówce, jak probówki z bulionem. Wzorzec może być przechowywany w ciemności, w temperaturze pokojowej przez 6 miesięcy, pod warunkiem, że jest zamknięty w sposób uniemożliwiający parowanie. Wymazówki Przygotowuje się zapas bawełnianych wymazówek na drewnianych patyczkach. Wymazówki sterylizuje się w autoklawie lub w sterylizatorach na suche gorące powietrze, umieszczając je w puszkach, probówkach lub opakowane w papier. Procedura Aby przygotować inoculum z hodowli na podłożu stałym, należy zebrać ezą 3 – 5 kolonii badanego mikroorganizmu o tym samym wyglądzie. 127
Page 1:
Podstawowe procedury laboratoryjne
Page 4 and 5:
Wydane przez World Health Organizat
Page 6 and 7:
podłożach do przesiewowych półi
Page 8 and 9:
SPIS TREŚCI Zakażenia górnych dr
Page 10 and 11:
Wstęp Choroby zakaźne są najczę
Page 12 and 13:
Zapewnienie jakości badań bakteri
Page 14 and 15:
ZAPEWNIENIE JAKOŚCI BADAŃ BAKTERI
Page 16 and 17:
Page 18 and 19:
Page 20 and 21:
Page 22 and 23:
Page 24 and 25:
Page 26 and 27:
Page 28 and 29:
Page 30 and 31:
Krew Wprowadzenie Hodowle z krwi pr
Page 32 and 33:
KREW Nawet po starannym przygotowan
Page 34 and 35:
KREW W rutynowych posiewach krwi in
Page 36 and 37:
Płyn mózgowo-rdzeniowy Wprowadzen
Page 38 and 39:
PŁYN MÓZGOWO-RDZENIOWY Tabela 7.
Page 40 and 41:
PŁYN MÓZGOWO-RDZENIOWY Oznaczanie
Page 42 and 43:
MOCZ Próbka moczu może zostać po
Page 44 and 45:
MOCZ (redukcji azotanów). Paski za
Page 46 and 47:
MOCZ odcisków płytkę inkubować
Page 48 and 49:
Kał Wprowadzenie Zakażenia bakter
Page 50 and 51:
KAŁ W większości regionów świa
Page 52 and 53:
KAŁ Pacjenta należy poinformować
Page 54 and 55:
KAŁ zastosować podstawowy agar z
Page 56 and 57:
KAŁ Wstępna identyfikacja izolowa
Page 58 and 59:
KAŁ Clostridium perfringens Gram-d
Page 60 and 61:
KAŁ Tabela 9. Morfologia kolonii p
Page 62 and 63:
KAŁ wykazują ruch, w preparacie w
Page 64 and 65:
KAŁ Shigella Jeśli wyniki wstępn
Page 66 and 67:
KAŁ Test hemaglutynacji pośrednie
Page 68 and 69:
KAŁ antygenów możliwa jest jedyn
Page 70 and 71:
KAŁ Procedura identyfikacji antyge
Page 72 and 73:
KAŁ • Jeśli pojawi się aglutyn
Page 74 and 75:
ZAKAŻENIA GÓRNYCH DRÓG ODDECHOWY
Page 76 and 77: ZAKAŻENIA GÓRNYCH DRÓG ODDECHOWY
Page 78 and 79: ZAKAŻENIA GÓRNYCH DRÓG ODDECHOWY
Page 80 and 81: ZAKAŻENIA DOLNYCH DRÓG ODDECHOWYC
Page 90 and 91: CHOROBY PRZENOSZONE DROGA˛ KONTAKT
Page 100 and 101: Ropne wydzieliny, rany i ropnie Wpr
Page 102 and 103: ROPNE WYDZIELINY, RANY I ROPNIE z u
Page 104 and 105: ROPNE WYDZIELINY, RANY I ROPNIE Zak
Page 106 and 107: ROPNE WYDZIELINY, RANY I ROPNIE - G
Page 108 and 109: ROPNE WYDZIELINY, RANY I ROPNIE kwa
Page 110 and 111: ROPNE WYDZIELINY, RANY I ROPNIE Tab
Page 112 and 113: ROPNE WYDZIELINY, RANY I ROPNIE Bad
Page 114 and 115: ZAKAŻENIA BAKTERIAMI BEZTLENOWYMI
Page 120 and 121: OZNACZANIE WRAŻLIWOŚCI NA ANTYBIO
Page 138 and 139: Badania serologiczne Wprowadzenie O
Page 140 and 141: BADANIA SEROLOGICZNE Wszystkie pipe
Page 142 and 143: BADANIA SEROLOGICZNE Powszechnie st
Page 144 and 145: BADANIA SEROLOGICZNE Dodatkowe mate
Page 146 and 147: BADANIA SEROLOGICZNE Surowica niero
Page 148 and 149: BADANIA SEROLOGICZNE 8. Kartoniki w
Page 150 and 151: BADANIA SEROLOGICZNE Fluorescencję
Page 152 and 153: BADANIA SEROLOGICZNE 7. Odczytać w
Page 154 and 155: BADANIA SEROLOGICZNE Dodatkowe mate
Page 156 and 157: BADANIA SEROLOGICZNE Do wykrywania
Page 158 and 159: Wprowadzenie Laboratorium, wykorzys
Page 160 and 161: PATOGENY, PODŁOŻA I ODCZYNNIKI DI
Page 172 and 173: Skorowidz Acinetobacter lwofii 20 -
Page 174 and 175: SKOROWIDZ Cefamandol 125 - strefy z
Page 176 and 177:
SKOROWIDZ Kał, identyfikacja bioch
Page 178 and 179:
SKOROWIDZ Odleżyny, owrzodzenia, p
Page 180 and 181:
SKOROWIDZ Staphylococcus aureus, a
Page 182:
SKOROWIDZ Yersinia enterocolitica 2
show all

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

Delete template?

Save as template?