Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
You also want an ePaper? Increase the reach of your titles
YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.
KAŁ<br />
Clostridium<br />
perfringens<br />
Gram-dodatnie tw<strong>or</strong>za˛ce sp<strong>or</strong>y laseczki,<br />
niektóre gatunki nie tw<strong>or</strong>za˛ce sp<strong>or</strong>,<br />
względnie beztlenowe lub<br />
katalazoujemne<br />
+ –<br />
Podwójna strefa hemolizy<br />
Indol<br />
+ – + –<br />
Indol<br />
+ –<br />
Ureaza<br />
+ –<br />
C. s<strong>or</strong>delli Wzrost<br />
mgławicowy<br />
+ –<br />
C. tetani Laktoza<br />
+ –<br />
C. sphenoides C. bifermentans<br />
Ruch<br />
+ –<br />
Charakterystyczna<br />
flu<strong>or</strong>escencja<br />
+ –<br />
Mannitol<br />
+ –<br />
C. ramosum<br />
C. clostridiof<strong>or</strong>me<br />
C. difficili Laktoza<br />
+ –<br />
Wzrost<br />
mgławicowy<br />
Wzrost<br />
mgławicowy<br />
+ – + –<br />
C. septicum C. tertium C. sp<strong>or</strong>ogenes C. novyi typ A<br />
Propionibacterium<br />
Redukcja<br />
acnes<br />
azotanu<br />
+ –<br />
Małe (1µm) przezroczyste<br />
kolonie ziarenko-pałeczek<br />
+ –<br />
Eubacterium<br />
lentum<br />
Ryc. 7b. Schemat wstępnej identyfikacji Gram-dodatnich pałeczek beztlenowych.<br />
Katalaza<br />
15% H 2 O 2<br />
+ –<br />
Redukcja<br />
azotanu<br />
+ –<br />
Actinomyces<br />
viscosus<br />
,,Beztlenowe pałeczki<br />
Gram-dodatnie nie<br />
tw<strong>or</strong>za˛ce sp<strong>or</strong>,<br />
niemożliwe do<br />
zidentyfikowania’’<br />
(obejmuje Lactobacillus,<br />
Bifidobacterium i inne<br />
gatunki Eubacterium)<br />
Actinomyces species<br />
(kolonie ,,zębów<br />
trzonowych’’)<br />
Propionibacterium<br />
species<br />
Szczepy Salmonella są oksydazoujemne, ruchliwe i indoloujemne. Nie hydrolizują<br />
mocznika i — z wyjątkiem S. paratyphi A — wytwarzają dekarboksylazę<br />
lizyny. Na agarze KIA obserwowany jest żółty słupek, czerwony skos, H 2 S i gaz,<br />
z wyjątkiem S. typhi, która nie wytwarza gazu, i większości szczepów S. paratyphi<br />
A, które są H 2 S-ujemne. Jeśli powyższe kryteria są spełnione, zanotować:<br />
,,izolacja Salmonella (identyfikacja wstępna)’’.<br />
Szczepy Shigella są oksydazoujemne, nieruchliwe, nie wytwarzają dekarboksylazy<br />
lizyny i nie hydrolizują mocznika. Na KIA obserwowany jest zasadowy<br />
(czerwony) skos i kwaśny (żółty) słupek, bez H 2 S i bez gazu, z wyjątkiem S. flexnerii<br />
serotyp 6 (warianty Newcastle i Manchester) i S. boydii serotyp 14, które<br />
wytwarzają gaz. Z wyjątkiem S. dysenteriae serotyp 1 bakterie wytwarzają<br />
katalazę. Jeśli powyższe kryteria są spełnione, zanotować: ,,izolacja Shigella<br />
(wstępna identyfikacja)’’.<br />
Yersinia enterocolitica<br />
Wzrost małych, bladych, czy też bezbarwnych koloni na podłożu MacConkeya<br />
lub agarze SS po całonocnej inkubacji może wskazywać na obecność Yersinia<br />
enterocolitica. Typowe kolonie należy posiać na KIA i inkubować w temperaturze<br />
25°C przez noc. Inne kolonie, prawdopodobnie ch<strong>or</strong>obotwórczych szczepów,<br />
posiać na dwa podłoża UREA i dwa podłoża MIL, inkubować równolegle po<br />
jednej z probówek w temperaturze 25°C i w temperaturze 35°C. Typowe szczepy<br />
Yersinia enterocolitica na podłożu KIA zakwaszają słupek, nie ma gazu i H 2<br />
S.<br />
58