24.10.2014 Views

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

SHOW MORE
SHOW LESS

Create successful ePaper yourself

Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.

ZAPEWNIENIE JAKOŚCI BADAŃ BAKTERIOLOGICZNYCH<br />

Tabela 3 cd.<br />

a<br />

Podłoże Inkubacja Organizm wskaźnikowy Oczekiwany wynik<br />

Trójcukrowy agar żelazowy (głębokość<br />

co najmniej 2,5 cm; inkubacja z luźna˛<br />

zakrętka˛)<br />

24 h Citrobacter freundii A/A gaz a +H 2 S<br />

S. typhimurium K/A gaz a +H 2 S<br />

S. flexneri K/A gaz a<br />

A. lwofii Brak reakcji<br />

Podłoże z mocznikiem 24 h E. coli Ujemny<br />

P. mirabilis Dodatni (różowy)<br />

Voges-Proskauer (patrz Czerwień metylowa/Voges-Proskauer)<br />

A/A: punkt kwaśny; K/A: punkt zasadowy.<br />

podstawowych należy wcześniej schłodzić. W przypadku stałych podłoży do<br />

oznaczenia pH należy użyć powierzchniowej elektrody lub rozmiękczyć<br />

podłoże w wodzie destylowanej. Jeśli pH różni się od zalecanego więcej niż<br />

o 0,2 jednostki, należy je sk<strong>or</strong>ygować kwasem lub zasadą, lub przygotować<br />

nową partię.<br />

2. Kontrola sterylności. Testy sterylności powinny być przeprowadzane rutynowo<br />

dla podłoży, do których po sterylizacji w autoklawie dodano krew lub inne<br />

składniki. 3–5% próbek należy poddać inkubacji w temperaturze 35°C przez<br />

2 dni. Pozostałe schłodzić. Jeśli na płytce pojawią się więcej niż dwie kolonie,<br />

należy odrzucić całą badaną partię.<br />

3. Kontrola jakości. Lab<strong>or</strong>at<strong>or</strong>ium powinno mieć zapas zestawów szczepów<br />

wz<strong>or</strong>cowych do monit<strong>or</strong>owania jakości podłoży. Lista zalecanych szczepów<br />

wz<strong>or</strong>cowych została przedstawiona w tabeli 2. Szczepy te mogą być uzyskane<br />

w trakcie rutynowej pracy lub pochodzić z komercyjnych czy też oficjalnych<br />

źródeł. Rekomendacje dotyczące utrzymania i wyk<strong>or</strong>zystania szczepów<br />

wz<strong>or</strong>cowych opisane zostały na str. 24.<br />

Lista testów przeprowadzanych dla powszechnie używanych podłoży przedstawiona<br />

została w tabeli 3.<br />

Procedury postępowania przy ocenie jakości nowych partii podłoża:<br />

1. Przygotować lekko mętną zawiesinę szczepów kontrolnych, p<strong>or</strong>ównującjąze<br />

wz<strong>or</strong>cem standardowego roztw<strong>or</strong>u siarczanu baru używanego w zmodyfikowanej<br />

metodzie Kirby-Bauera (McFarland 0,5) (patrz str. 125) i użyć jedno<br />

oczko ezy jako inoculum.<br />

2. Inkubować przez rutynowo stosowany okres i odczytać zgodnie z przyjętymi<br />

zasadami.<br />

3. Właściwie zapisać wyniki.<br />

Barwniki i odczynniki<br />

Zalecenia dotyczące testowania niektórych odczynników przedstawiono w tabeli<br />

4. Testy powinny być przeprowadzane:<br />

– za każdym razem przy przygotowywaniu nowej partii roztw<strong>or</strong>u roboczego;<br />

– co tydzień (niezbędne w przypadku zimnego barwnika Ziehl-Neelsena:<br />

klasyczny ma kilkumiesięczny termin przydatności).<br />

Odczynniki i barwniki powinny być dyskwalifikowane, jeśli:<br />

– termin ważności określony przez producenta jest przekroczony;<br />

– widoczne są oznaki psucia (zmętnienie, osad, zmiana barwy).<br />

22

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!