24.10.2014 Views

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

SHOW MORE
SHOW LESS

Create successful ePaper yourself

Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.

CZE˛ŚĆ I<br />

W niektórych lab<strong>or</strong>at<strong>or</strong>iach wstępna identyfikacja potwierdzana jest serologicznie<br />

przez wykazanie obecności specyficznych polisacharydów ściany komórkowej.<br />

Test może być przeprowadzony z użyciem klasycznej metody precypitacji lub<br />

— szybciej — zużyciem komercyjnych przeciwciał w teście szybkiej koaglutynacji<br />

szkiełkowej lub w teście aglutynacji lateksowej. Jeśli istnieje taka<br />

potrzeba, β-hemolizujące paci<strong>or</strong>kowce op<strong>or</strong>ne na bacytracynę można identyfikować<br />

wyk<strong>or</strong>zystując do tego celu proste testy (patrz tabela 19).<br />

Obecność S. pyogenes w posiewie z gardła powinna zostać określona w wyniku<br />

w sposóbpółilościowy (nieliczne, +, ++ lub +++). Masywny wzrost S. pyogenes<br />

na całej powierzchni płytki jest charakterystyczny dla materiałów pobranych od<br />

pacjentów z paci<strong>or</strong>kowcowym zapaleniem gardła. Hodowle od nosicieli wykazują<br />

zwykle wzrost mniej niż 20 kolonii na płytce. Obecność nawet nielicznych kolonii<br />

β-hemolizujących paci<strong>or</strong>kowców powinna zostać potwierdzona i zanotowana.<br />

Tabela 19. Różnicowanie β-hemolizuja˛cych paci<strong>or</strong>kowców<br />

Gatunki S. pyogenes S. agalactiae<br />

E. faecalis<br />

var. zymogenes a<br />

Inne<br />

Grupa Lancefield A B D C, G, F<br />

Hemoliza β β b β β<br />

Strefa wokółróżnicuja˛cego<br />

+ 0 c 0 c 0 d<br />

kra˛żka z bacytracy-<br />

na˛<br />

Agar z żółcia˛ i z eskulina˛ 0 0 + 0<br />

(wzrost i zaczernienie)<br />

Odwrotny test CAMP 0 + 0 0<br />

Wrażliwość na kotrimoksazol<br />

0 0 0 +<br />

e<br />

Test PYR f + 0 + 0<br />

a<br />

b<br />

c<br />

d<br />

e<br />

f<br />

E. faecalis var. zymogenes wykazuja˛ce β-hemolizę tylko na agarze z krwia˛ końska˛.<br />

5% niehemolizuja˛cych.<br />

5% dodatnich.<br />

10% dodatnich.<br />

Kra˛żek jak w teście Kirby-Bauera.<br />

PYR: pirolidonylo-β-naftylamid.<br />

Hodowla C<strong>or</strong>ynebacterium diphtheriae<br />

Mimo że maczugowiec błonicy dobrze rośnie na zwykłym agarze z krwią, lepszy<br />

wzrost uzyskuje się przy posiewie na jedno z dwóch specjalnych podłoży:<br />

• Skoagulowana surowica Löfflera lub podłoże jajeczne D<strong>or</strong>seta. Jakkolwiek<br />

nieselektywne, obydwa te podłoża umożliwiają obfity wzrost maczugowca<br />

błonicy po jednodniowej inkubacji. Ponadto m<strong>or</strong>fologia komórek jest bardziej<br />

,,typowa’’: nieregularnie wybarwione, krótkie lub długie, lekko zakrzywione<br />

pałeczki wykazujące metachromatyczne ziarnistości i ułożone w kształt V lub<br />

równoległych palisad. Metachromatyczne ziarnistości są wyraźniej widoczne<br />

po wybarwieniu błękitem metylenowym lub barwieniu Alberta niż po zabarwieniu<br />

metodą Grama.<br />

• Selektywny agar tellurynowy z krwia˛. Podłoże to ułatwia izolację, jeśli<br />

maczugowce są nieliczne, jak np. w przypadku nosicieli. Na tym podłożu<br />

kolonie maczugowców błonicy są szarawe lub czarne, a pełny wzrost pojawia<br />

się po 48 godzinach. Charakterystyczne kolonie, zawierające w preparacie<br />

barwionym metodą Grama pałeczki o m<strong>or</strong>fologii podobnej do maczugowców,<br />

należy przesiać na płytkę z agarem z krwią i określić ich czystość <strong>or</strong>az<br />

77

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!