Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Create successful ePaper yourself
Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.
CZE˛ŚĆ I<br />
W niektórych lab<strong>or</strong>at<strong>or</strong>iach wstępna identyfikacja potwierdzana jest serologicznie<br />
przez wykazanie obecności specyficznych polisacharydów ściany komórkowej.<br />
Test może być przeprowadzony z użyciem klasycznej metody precypitacji lub<br />
— szybciej — zużyciem komercyjnych przeciwciał w teście szybkiej koaglutynacji<br />
szkiełkowej lub w teście aglutynacji lateksowej. Jeśli istnieje taka<br />
potrzeba, β-hemolizujące paci<strong>or</strong>kowce op<strong>or</strong>ne na bacytracynę można identyfikować<br />
wyk<strong>or</strong>zystując do tego celu proste testy (patrz tabela 19).<br />
Obecność S. pyogenes w posiewie z gardła powinna zostać określona w wyniku<br />
w sposóbpółilościowy (nieliczne, +, ++ lub +++). Masywny wzrost S. pyogenes<br />
na całej powierzchni płytki jest charakterystyczny dla materiałów pobranych od<br />
pacjentów z paci<strong>or</strong>kowcowym zapaleniem gardła. Hodowle od nosicieli wykazują<br />
zwykle wzrost mniej niż 20 kolonii na płytce. Obecność nawet nielicznych kolonii<br />
β-hemolizujących paci<strong>or</strong>kowców powinna zostać potwierdzona i zanotowana.<br />
Tabela 19. Różnicowanie β-hemolizuja˛cych paci<strong>or</strong>kowców<br />
Gatunki S. pyogenes S. agalactiae<br />
E. faecalis<br />
var. zymogenes a<br />
Inne<br />
Grupa Lancefield A B D C, G, F<br />
Hemoliza β β b β β<br />
Strefa wokółróżnicuja˛cego<br />
+ 0 c 0 c 0 d<br />
kra˛żka z bacytracy-<br />
na˛<br />
Agar z żółcia˛ i z eskulina˛ 0 0 + 0<br />
(wzrost i zaczernienie)<br />
Odwrotny test CAMP 0 + 0 0<br />
Wrażliwość na kotrimoksazol<br />
0 0 0 +<br />
e<br />
Test PYR f + 0 + 0<br />
a<br />
b<br />
c<br />
d<br />
e<br />
f<br />
E. faecalis var. zymogenes wykazuja˛ce β-hemolizę tylko na agarze z krwia˛ końska˛.<br />
5% niehemolizuja˛cych.<br />
5% dodatnich.<br />
10% dodatnich.<br />
Kra˛żek jak w teście Kirby-Bauera.<br />
PYR: pirolidonylo-β-naftylamid.<br />
Hodowla C<strong>or</strong>ynebacterium diphtheriae<br />
Mimo że maczugowiec błonicy dobrze rośnie na zwykłym agarze z krwią, lepszy<br />
wzrost uzyskuje się przy posiewie na jedno z dwóch specjalnych podłoży:<br />
• Skoagulowana surowica Löfflera lub podłoże jajeczne D<strong>or</strong>seta. Jakkolwiek<br />
nieselektywne, obydwa te podłoża umożliwiają obfity wzrost maczugowca<br />
błonicy po jednodniowej inkubacji. Ponadto m<strong>or</strong>fologia komórek jest bardziej<br />
,,typowa’’: nieregularnie wybarwione, krótkie lub długie, lekko zakrzywione<br />
pałeczki wykazujące metachromatyczne ziarnistości i ułożone w kształt V lub<br />
równoległych palisad. Metachromatyczne ziarnistości są wyraźniej widoczne<br />
po wybarwieniu błękitem metylenowym lub barwieniu Alberta niż po zabarwieniu<br />
metodą Grama.<br />
• Selektywny agar tellurynowy z krwia˛. Podłoże to ułatwia izolację, jeśli<br />
maczugowce są nieliczne, jak np. w przypadku nosicieli. Na tym podłożu<br />
kolonie maczugowców błonicy są szarawe lub czarne, a pełny wzrost pojawia<br />
się po 48 godzinach. Charakterystyczne kolonie, zawierające w preparacie<br />
barwionym metodą Grama pałeczki o m<strong>or</strong>fologii podobnej do maczugowców,<br />
należy przesiać na płytkę z agarem z krwią i określić ich czystość <strong>or</strong>az<br />
77