24.10.2014 Views

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..

SHOW MORE
SHOW LESS

Create successful ePaper yourself

Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.

MOCZ<br />

(redukcji azotanów). Paski zanurza się w próbce moczu zgodnie z instrukcją<br />

zawartą w ulotce. Różowe zabarwienie jest dodatnim wynikiem i wskazuje na<br />

obecność esterazy leukocytowej i/lub bakteriurię rzędu 10 5 w 1 ml. Próbki<br />

dodatnie w testach przesiewowych należy jak najszybciej poddać hodowli, aby<br />

zapobiec przerostowi przez nieznaczące szczepy. Jeśli paski nie wykażą różowego<br />

zabarwienia, badanie przesiewowe interpretowane jest jako ujemne i hodowla<br />

nie jest konieczna. Testy paskowe nie są wystarczająco czułe, aby wykryć<br />

bakteriurię mniejszą niż 10 5 komórek w 1 ml moczu.<br />

Posiew ilościowy i wstępna identyfikacja<br />

Zalecane są dwie metody posiewu ilościowego i wstępnej identyfikacji: metoda<br />

zużyciem kalibrowanej ezy <strong>or</strong>az metoda z użyciem zanurzonego papierowego<br />

filtra paskowego.<br />

Metoda z użyciem kalibrowanej ezy<br />

Zalecane jest użycie kalibrowanej plastikowej lub platynowej ezy, za pomocą<br />

której należy przenieść 1 µl moczu na podłoże do hodowli (agar MacConkeya<br />

z fioletem krystalicznym i nieselektywny agar z krwią).<br />

1. Wstrząsnąć delikatnie mocz, a następnie przechylić i 1-mikrolitrową ezą<br />

dotknąć powierzchni w taki sposób, aby zawiesić w niej płyn. Nigdy nie<br />

zanurzać oczka ezy w moczu.<br />

2. Umieścić 1 µl moczu na podłożu agarowym z krwią i rozmazać, tw<strong>or</strong>ząc prostą<br />

linię do środka płytki (1), następnie gęstym zygzakiem, pod kątem w prawo,<br />

przez początkową linię (2) i na koniec skośnym zygzakiem, przecinającym<br />

dwa poprzednie pasma (3) (ryc. 3).<br />

3. Posiać na podłoże MacConkeya w ten sam sposób.<br />

4. Inkubować płytki przez noc w 35°C.<br />

Agar z krwią i podłoże MacConkeya można zastąpić innymi nieselektwnymi<br />

podłożami (np.: CLED 1 , agar z fioletem krystalicznym i laktozą).<br />

Metoda pasków bibułowych<br />

Metoda pasków bibułowych Leigh&Williams 2 polega na abs<strong>or</strong>pcji określonej<br />

ilości moczu, który następnie jest przenoszony na płytkę zwłaściwym podłożem<br />

agarowym.<br />

Paski o długości 7,5 cm i szerokości 0,6 cm mogą być przygotowane na miejscu<br />

zużyciem specjalnego typu bibuły (patrz ryc. 4). Są oznaczone ołówkiem z jednej<br />

strony — 1,2 cm od końca. Metoda pasków bibułowych przed wprowadzeniem do<br />

rutynowych badań powinna zostać p<strong>or</strong>ównana z metodą zużyciem kalibrowanej<br />

ezy.<br />

Bibułowe paski należy przygotować w odpowiedniej ilości, umieścić we<br />

właściwym pojemniku i autoklawować. Sterylne paski są komercyjnie dostępne.<br />

1<br />

CLED: z niedob<strong>or</strong>em cystyny, laktozy i elektrolitów; Cystine-Lactose-Electrolyte Deficient.<br />

2<br />

Leigh D.A., Williams J.D.: Metoda wyk<strong>or</strong>zystywana do oznaczenia znamiennej bakteriurii<br />

w szerokiej grupie pacjentów. Journal of Clinical Pathology, 1964, 17: 498 – 503.<br />

44

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!