Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Podstawowe procedury laboratoryjne w ... - digicollection.or..
Create successful ePaper yourself
Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.
MOCZ<br />
(redukcji azotanów). Paski zanurza się w próbce moczu zgodnie z instrukcją<br />
zawartą w ulotce. Różowe zabarwienie jest dodatnim wynikiem i wskazuje na<br />
obecność esterazy leukocytowej i/lub bakteriurię rzędu 10 5 w 1 ml. Próbki<br />
dodatnie w testach przesiewowych należy jak najszybciej poddać hodowli, aby<br />
zapobiec przerostowi przez nieznaczące szczepy. Jeśli paski nie wykażą różowego<br />
zabarwienia, badanie przesiewowe interpretowane jest jako ujemne i hodowla<br />
nie jest konieczna. Testy paskowe nie są wystarczająco czułe, aby wykryć<br />
bakteriurię mniejszą niż 10 5 komórek w 1 ml moczu.<br />
Posiew ilościowy i wstępna identyfikacja<br />
Zalecane są dwie metody posiewu ilościowego i wstępnej identyfikacji: metoda<br />
zużyciem kalibrowanej ezy <strong>or</strong>az metoda z użyciem zanurzonego papierowego<br />
filtra paskowego.<br />
Metoda z użyciem kalibrowanej ezy<br />
Zalecane jest użycie kalibrowanej plastikowej lub platynowej ezy, za pomocą<br />
której należy przenieść 1 µl moczu na podłoże do hodowli (agar MacConkeya<br />
z fioletem krystalicznym i nieselektywny agar z krwią).<br />
1. Wstrząsnąć delikatnie mocz, a następnie przechylić i 1-mikrolitrową ezą<br />
dotknąć powierzchni w taki sposób, aby zawiesić w niej płyn. Nigdy nie<br />
zanurzać oczka ezy w moczu.<br />
2. Umieścić 1 µl moczu na podłożu agarowym z krwią i rozmazać, tw<strong>or</strong>ząc prostą<br />
linię do środka płytki (1), następnie gęstym zygzakiem, pod kątem w prawo,<br />
przez początkową linię (2) i na koniec skośnym zygzakiem, przecinającym<br />
dwa poprzednie pasma (3) (ryc. 3).<br />
3. Posiać na podłoże MacConkeya w ten sam sposób.<br />
4. Inkubować płytki przez noc w 35°C.<br />
Agar z krwią i podłoże MacConkeya można zastąpić innymi nieselektwnymi<br />
podłożami (np.: CLED 1 , agar z fioletem krystalicznym i laktozą).<br />
Metoda pasków bibułowych<br />
Metoda pasków bibułowych Leigh&Williams 2 polega na abs<strong>or</strong>pcji określonej<br />
ilości moczu, który następnie jest przenoszony na płytkę zwłaściwym podłożem<br />
agarowym.<br />
Paski o długości 7,5 cm i szerokości 0,6 cm mogą być przygotowane na miejscu<br />
zużyciem specjalnego typu bibuły (patrz ryc. 4). Są oznaczone ołówkiem z jednej<br />
strony — 1,2 cm od końca. Metoda pasków bibułowych przed wprowadzeniem do<br />
rutynowych badań powinna zostać p<strong>or</strong>ównana z metodą zużyciem kalibrowanej<br />
ezy.<br />
Bibułowe paski należy przygotować w odpowiedniej ilości, umieścić we<br />
właściwym pojemniku i autoklawować. Sterylne paski są komercyjnie dostępne.<br />
1<br />
CLED: z niedob<strong>or</strong>em cystyny, laktozy i elektrolitów; Cystine-Lactose-Electrolyte Deficient.<br />
2<br />
Leigh D.A., Williams J.D.: Metoda wyk<strong>or</strong>zystywana do oznaczenia znamiennej bakteriurii<br />
w szerokiej grupie pacjentów. Journal of Clinical Pathology, 1964, 17: 498 – 503.<br />
44