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Immunhistologische Charakterisierung primärer Neoplasien des ...

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Material und Methoden<br />

Abb. 3.10: H.E.-Schnitt eines Multiblocks, blaue Pfeile markieren die Orientierungsstanze,<br />

gelber Pfeil markiert die Position 1, roter Pfeil die<br />

Position 60<br />

3.7 Immunhistologie<br />

Bei allen in der Studie verwendeten Antikörpern wurde zur immunhistologischen<br />

Phänotypisierung der Tumoren die Avidin-Biotin-Peroxidase-Komplex-Methode<br />

(ABC-Methode) als Detektionssystem eingesetzt. Dabei wurden biotinilierte, speziesspezifische<br />

Sekundärantikörper verwendet. Die immunhistologische Färbung<br />

wurde mit 15 kommerziell erhältlichen, monoklonalen und polyklonalen Antikörpern<br />

durchgeführt (Tab. 3.1).<br />

3.7.1 Antikörper und Seren<br />

Primär- und Sekundärantikörper wurden in Phospat-gepufferter Kochsalzlösung<br />

(PBS, Herstellung siehe Anhang 9.3.1) mit 1%igem bovinem Serumalbumin verdünnt.<br />

Zur Verdünnung der Komponenten <strong>des</strong> Detektionssystems wurde nur PBS<br />

verwendet.<br />

3.7.1.1 Blocking-Seren<br />

Zum Blockieren unspezifischer Bindungsstellen im Gewebe wurde je nach Antikörper<br />

Ziegen-Normalserum (ZS) oder Pferde-Normalserum (PS) (siehe Tab. 3.2) eingesetzt.<br />

Die Seren stammen von in der Klink für kleine Klauentiere und Klinik für Pferde<br />

der Tierärztlichen Hochschule Hannover eingestellten gesunden Tieren. Nach mehrstündigem<br />

Stehen <strong>des</strong> Blutes wurden sie durch Zentrifugation für 10 Minuten bei 370<br />

x g (Minifuge RF; Fa. Kendro Laboratory Products, Langenselbold) gewonnen. Durch<br />

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