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Quantitativer Nachweis von Lawsonia intracellularis mittels real-time ...

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3.2.11 Klonierung<br />

Material und Methoden<br />

Mit dem Ziel, einen Standard für die absolute Quantifizierung herzustellen, wurde ein<br />

Abschnitt des Zielgens, in dem auch die Zielsequenz der <strong>real</strong>-<strong>time</strong> PCR kodiert ist, in<br />

einen Vektor ligiert. Mit diesem Vektor wurden kompetente E. coli transformiert und<br />

anschließend in Kulturmedium vermehrt. Die Plasmide mit der Zielsequenz wurden<br />

isoliert und als Standards verwendet. Plasmid-DNA eignet sich für diese Applikation<br />

besonders gut, weil sie eine hohe Stabilität besitzt und reproduzierbare Ergebnisse<br />

erzeugt.<br />

Die DNA des Referenzstammes <strong>Lawsonia</strong> <strong>intracellularis</strong> MS B3930 und drei L.<br />

<strong>intracellularis</strong>-positiver Kotproben aus der Routinediagnostik wurden aufgereinigt<br />

(DNeasy ® Blood & Tissue Kit und QIAamp ® DNA Stool Mini Kit) und spezifische<br />

Genomfragmente <strong>von</strong> L. <strong>intracellularis</strong> mit den Primern Ubi-Clon-lang-F und –R<br />

amplifiziert. Diese Primer kopieren einen größeren Genomabschnitt <strong>von</strong> L.<br />

<strong>intracellularis</strong>, der die eigentliche Zielsequenz der <strong>real</strong>-<strong>time</strong> PCR beinhaltet. Zur<br />

Überprüfung der optimalen annealing-Temperatur der Primer Ubi-Clon-lang-F und –<br />

R wurde zunächst eine Gradienten-PCR auf dem Thermocycler durchgeführt (Tab.<br />

21). Anschließend wurde die DNA aller vier Proben mit einem Protokoll amplifziert,<br />

dass eine annealing-Temperatur <strong>von</strong> 61,6 °C enthielt (Tab. 22).<br />

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