6 Diskussion AGTR1 C- im Vergleich <strong>zu</strong>r AGTR1 A-Variante nicht stärker durch die miR-155_SNP gehemmt und die TCF21 G-Variante zeigte e<strong>in</strong>e vergleichbare Hemmung durch beide verwendeten miR-224 Varianten, unabhängig davon, ob e<strong>in</strong> seed-match oder seed-mismatch vorlag. Der Ausgleich e<strong>in</strong>es mismatches zwischen miRNA und Ziel-RNA durch Modifikation des miRNA guide Stranges ist <strong>zu</strong>dem nicht für die miR-<strong>SNPs</strong> geeignet, die außerhalb e<strong>in</strong>er miRNA B<strong>in</strong>destelle lokalisiert s<strong>in</strong>d (z.B. MRAS rs9818870 und DHFR rs34764978). E<strong>in</strong>e Möglichkeit für Allel-spezifische Therapieansätze derartiger miR-<strong>SNPs</strong> böte die von Wang et al. vorgeschlagene miRNA Mimic Technology, auch miR-Mimic genannt [192, 193]. Die Sequenzen der miR-Mimics entsprechen nicht den authentischen miRNA-Sequenzen sondern sie s<strong>in</strong>d Gen-spezifisch. Die seed Region sowie der 3’-Bereich des miR-Mimics werden entsprechend der Ziel-Gen Sequenz generiert. Von großer Bedeutung für das Design Sequenzspezifischer miR-Mimics ist, vergleichbar mit der Auswahl geeigneter siRNA-Sequenzen, das Vermeiden unspezifischer, sogenannter off target, Effekte. Es gibt Grund <strong>zu</strong> der Prognose, dass die Weiterentwicklung und der E<strong>in</strong>satz miRNAbasierter Wirkstoffe <strong>in</strong> kl<strong>in</strong>ischen Studien langfristig ebenfalls <strong>zu</strong> Therapieansätzen für miR- SNP-<strong>in</strong>duzierte molekularer Pathomechanismen führen kann. 152
7 Literaturverzeichnis [1] CHEN, K. ; RAJEWSKY, N.: The evolution of gene regulation by transcription factors and microRNAs. In: Nat Rev Genet 8 (2007), S. 93–103 [2] CAMPBELL, N.A. ; REECE, J.B.: Biologie. 6. Auflage. Spektrum Akademischer Verlag Heidelberg-Berl<strong>in</strong>, 2003. – S. 425 [3] BARREIRO, L. B. ; LAVAL, G. ; QUACH, H. ; PATIN, E. ; QUINTANA-MURCI, L.: Natural selection has driven population differentiation <strong>in</strong> modern humans. In: Nat Genet 40 (2008), S. 340–345 [4] RYAN, B. M. ; ROBLES, A. I. ; HARRIS, C. C.: Genetic variation <strong>in</strong> microRNA networks: the implications for cancer research. In: Nat Rev Cancer 10 (2010), S. 389–402 [5] WINEINGER, N. E. ; TIWARI, H. K.: The impact of errors <strong>in</strong> copy number variation detection algorithms on association results. In: PLoS One 7 (2012), S. e32396 [6] MCCARROLL, S. A. ; ALTSHULER, D. M.: Copy-number variation and association studies of human disease. In: Nat Genet 39 (2007), S. S37–S42 [7] OLSON, M. V.: The human genome project. In: Proc Natl Acad Sci U S A 90 (1993), S. 4338– 4344 [8] LIU, C.-K. ; CHEN, Y.-H. ; TANG, C.-Y. ; CHANG, S.-C. ; LIN, Y.-J. ; TSAI, M.-F. ; CHEN, Y.-T. ; YAO, A.: Functional analysis of novel <strong>SNPs</strong> and mutations <strong>in</strong> human and mouse genomes. In: BMC Bio<strong>in</strong>formatics 9 Suppl 12 (2008), S. S10 [9] THE 1000 GENOMES PROJECT CONSORTIUM: A map of human genome variation from population-scale sequenc<strong>in</strong>g. In: Nature 467 (2010), S. 1061–1073 [10] BROOKES, A. J.: The essence of <strong>SNPs</strong>. In: Gene 234 (1999), S. 177–186 [11] OLIVIER, M.: From <strong>SNPs</strong> to function: the effect of sequence variation on gene expression. Focus on “ A survey of genetic and epigenetic variation affect<strong>in</strong>g human gene expression “. In: Physiol Genomics 16 (2004), S. 182–183 [12] SAVAGE, S. A. ; STEWART, B. J. ; ECKERT, A. ; KILEY, M. ; LIAO, J. S. ; CHANOCK, S. J.: Genetic variation, nucleotide diversity, and l<strong>in</strong>kage disequilibrium <strong>in</strong> seven telomere stability genes suggest that these genes may be under constra<strong>in</strong>t. In: Hum Mutat 26 (2005), Oct, Nr. 4, S. 343–350 [13] CASTLE, J. C.: <strong>SNPs</strong> occur <strong>in</strong> regions with less genomic sequence conservation. In: PLoS One 6 (2011), S. e20660 [14] NICOLOSO, M. S. ; SUN, H. ; SPIZZO, R. ; KIM, H. ; WICKRAMASINGHE, P. ; SHIMIZU, M. ; WOJCIK, S. E. ; FERDIN, J. ; KUNEJ, T. ; XIAO, L. ; MANOUKIAN, S. ; SECRETO, G. ; RAVAGNANI, F. ; WANG, X. ; RADICE, P. ; CROCE, C. M. ; DAVULURI, R. V. ; CALIN, G. A.: S<strong>in</strong>gle-nucleotide polymorphisms <strong>in</strong>side microRNA target sites <strong>in</strong>fluence tumor susceptibility. In: Cancer Res 70 (2010), S. 2789–98 [15] STENINA, O. I. ; BYZOVA, T. V. ; ADAMS, J. C. ; MCCARTHY, J. J. ; TOPOL, E. J. ; PLOW, E. F.: Coronary artery disease and the thrombospond<strong>in</strong> s<strong>in</strong>gle nucleotide polymorphisms. In: Int J Biochem Cell Biol 36 (2004), S. 1013–1030 [16] KUBOTA, T. ; HORIE, M. ; TAKANO, M. ; YOSHIDA, H. ; TAKENAKA, K. ; WATANABE, E. ; TSUCHIYA, T. ; OTANI, H. ; SASAYAMA, S.: Evidence for a s<strong>in</strong>gle nucleotide polymorphism <strong>in</strong> the KCNQ1 153