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ESTIMULACIÓN DE CULTIVOS DE CÉLULAS TRONCALES IN VITRO POR MEDIO DE CAMPOS MAGNÉTICOS
Posteriormente se empleó una tira nervios para extraer la
pulpa del centro del diente, a continuación, dicha pulpa se
coloca en una caja de cultivo para lavarlo con PBS y por
último alimentarlo con medio D-MEM 15 con 10% de suero
fetal bovino, con 1% de antibiótico-antimicótico y 1% de
glutamina.
Se procede a revisar la caja de cultivo y si se observa si el
área de cultivo es mayor al 60% de su capacidad, se procede
a tripsinizar para continuar expandiendo el cultivo en otras
cajas.
Una vez que se obtuvieron un millón de células se procede
sembrar 5000 células en cada pocillo de una placa con 24
pocillos. Como parte de la metodología se utilizaron una
placa para cada estimulador y una placa de control.
La estimulación de los cultivos
Las placas fueron asignadas a un determinado nivel de
estimulación magnética. Las cuales fueron realizadas con
imanes de neodimio, imanes de ferrita y un inductor.
Para el estudio se realizaron dos ensayos donde se emplearon
4 placas en el primero; una para cada estímulo y una de
control que no fue estimulada por ningún campo magnético.
Los ensayos de estimulación se dividieron en dos periodos,
el primero tuvo una duración de 4 días seguidos y se
estimularon por 30 minutos.
La tinción de las células para realizar análisis morfológico
Tinción con Cristal Violeta
El Cristal violeta fue empleado para identificar la
morfología de las células al poder resaltar la membrana
celular, la membrana nuclear entre otros componentes. Para
esta tinción fueron fija-dos. Posteriormente fueron teñidas
con 300 μl de Cristal violeta durante 5 minutos dentro de la
incubadora. Posteriormente fueron lavadas 2 veces con
agua destilada. En el primer experimento fueron teñidos los
días 0, 7, 14. En el segundo experimento el día 7.
Tinción con Rojo Oleoso
El Oil Red es un colorante empleado para teñir lípidos. Su
principal uso es el reconocimiento de cuerpos lipídicos.
Primero se fijan los cultivos. Luego fueron lavados con
isopropanol al 60% durante 1 minuto. Posteriormente
fueron tenidos con 300 μl de solución Oil Red durante 5
minutos. Se repitió el lavado con isopropanol y finalmente
fueron lavadas con Agua destilada. La tinción fue realizada
el día 7.
Tinción con Azul de Toluidina
Para la identificación de tejido cartilaginoso fue empleado
la tinción con azul de Toluidina, la cual tiñe compuestos de
la matriz extracelular como grupos de proteoglicanos y
glicosaminoglicanos propios del cartílago. Primero fue
retirado el medio que contenía. Para quitar posibles
contaminantes fueron lavadas dos veces con 300 μl de PBS,
posteriormente fueron fijados con HCl con concentración
molar de 0.1% durante 5 minutos. Luego fueron teñidos
con 300 μl de azul de toluidina durante 1 hora con 30
minutos. Para retirar el exceso de colorante fueron lavadas
con 300 μl de HCl con concentración molar de 0.1%
durante 5 minutos. Por último, fue retirado el exceso de
HCl empleando agua destilada durante 5 minutos. La
tinción fue realizada el día 7.
Análisis de distribución y morfología
Para el análisis de la distribución y morfología de cada
cultivo celular se tomaron como puntos de análisis la forma
de las células, clasificándolas como: células alargadas,
redondas, dendríticas, ovaladas y amorfas. Como parte de la
determinación de diferenciación se realizaron tinciones para
determinar el tipo de núcleo o núcleos, distribución de
organillos y compuesto claves con el fin de determinar el
linaje celular.
El estudio de distribución se realizó analizando las imágenes
de cada uno de los cultivos estimulados, para ello se comenzó
con la búsqueda de patrones claves que representen una
orientación o que un conjunto de células posea una dirección
definida. Dichas direcciones fueron analizadas a través del
estudio de la pendiente de cada célula que compone estos
patrones. Se cuantifico y señalo las rutas o secuencias
desarrolladas por la interacción del campo magnético. Al
final se compararon los efectos de cada campo estudiando los
gradientes vectoriales y sus ecuaciones a través del software
Grapher. Se encontraron factores involucrados en los
cambios morfológicos de las células debido a la forma e
intensidad de campos magnéticos.
Figura 2. Patrones en la orientación de las células mostradas en las
estimulaciones
RESULTADOS
Por medio del uso de limadura de hierro se observaron las
líneas de fuerza del campo magnético cada estimulador a
nivel de la interacción con el cultivo. Los cuales se describen
a partir del gradiente vectorial de la ecuación aproximada a
una circunferencia, siendo las ecuaciones de los gradientes
del campo:
1) Ferrita Δx=x/√(y^2+x^2 ), Δy=y/√(y^2+x^2 )
Al comparar los valores obtenidos en el planos XY se
encontraron como valor máximo en el centro del campo:
9.29 µT y como mínimo a 5 cm del centro: 0.49 µT.
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